Page 115 - 《广西植物》2020年第1期
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1 期                              黄宁珍等: 青钱柳的快速繁殖技术                                          1 1 1


                      表 1  青钱柳外植体类型、采样季节和消毒时间对消毒效果的影响
   Table 1  Effects of explants typeꎬ sampling season and disinfection time on disinfection efficacy of Cyclocarya paliurus (14 d)

                                                                污染率                    外植体
                                                   0.1% HgCl 2
                                                    消毒时间                 存活率
    编号     采样时间      采样部位                                       Pollution             褐化情况
                                                  Disinfection time    Survival rate
     No.  Sampling time  Sampling part                            rate                 Browning
                                                                          (%)
                                                   of 0.1% HgCl 2
                                                                 (%)                  of explants
                                                     (min)
     1    8 月—10 月   顶芽、未木质化及轻微木质化茎段                  5~10       67.6      0         全部褐化死亡
          Aug. to Otc.  Apical budsꎬ non ̄lignified and slightly ̄                     All browning
                     lignified stem segments                                          and death
     2     4 月—6 月   顶芽及未木质化茎段                        5~10       49.1      0         全部褐化死亡
          Apr. to Jun.  Apical buds and non ̄lignified stem seg ̄                      All browning
                     ments                                                            and death
     3     4 月—6 月   轻微木质化茎段                          5~7      45.9±7.2 a 88.7±5.4 a  少数褐化死亡
          Apr. to Jun.  Slightly ̄lignified stem segments                         A few browning and death
     4     4 月—6 月   轻微木质化茎段                          8~10     43.9±5.3 a 65.3±7.9 b  部分褐化死亡
          Apr. to Jun.  Slightly ̄lignified stem segments                         Partial browning and death
     注: 同一列不同的小写字母表示 0.05 水平差异显著ꎮ 下同ꎮ
     Note: Different lowercase letters in the same column indicate significant differences at the 0.05 level. The same below.

        表 2  青钱柳初代诱导培养基及培养效果                         L 时ꎬ所诱导的再生芽以单芽为主ꎻ在 6 ̄BA 浓度
                                                        ̄1
                                                                   ̄1
     Table 2  Primary culture media and culture effects  为 4.0 mg∙L 时ꎬ所诱导的再生芽中有一定数量
              of Cyclocarya paliurus(21 d)
                                                     的丛生芽ꎬ但玻璃化比较严重ꎮ (3) 青钱柳在继代
                培养基            芽诱导率      芽高(cm)      增殖培养基中易玻璃化ꎬ当培养基中 6 ̄BA≥1.0
    编号
                Medium        Bud induction  Height of      ̄1                             ̄1
     No.             ̄1                               mg∙L 、IBA 或 IAA 浓度在 0.1 mg∙L 以上时ꎬ随
               (mg∙L )         rate (%)    shoot
                                                     着激素浓度升高和培养代数增多ꎬ玻璃化程度越
     1     MS+6 ̄BA 1.0+IBA 0.1  68.7±5.6b  3.5±0.3a
                                                     加严重(图 1:B)ꎮ (4) 以 KT 或 ZT 代替 6 ̄BAꎬ产
     2     MS+6 ̄BA 2.0+IBA 0.2  80.5±6.8a  3.5±0.2a
                                                     生大量愈伤组织ꎬ无法诱导出下一代芽苗ꎮ (5) 以
     3     MS+6 ̄BA 4.0+IBA 0.4  52.4±6.5c  1.5±0.5b
                                                     NAA 代替 IBA 或 IAAꎬ诱导的愈伤过多ꎬ虽能诱导
     4     MS+6 ̄BA 8.0+IBA 0.8  20.8±3.8e  1.0±0.3b
     5    WPM +6 ̄BA 1.0+IBA 0.1  55.2±5.5c  3.0±0.2a  出芽苗ꎬ但随着培养进程的后延ꎬ芽苗逐渐黄化ꎮ
     6    WPM+6 ̄BA 2.0+IBA 0.2  68.5±6.4b  3.0±0.2a  因此ꎬ可用于青钱柳继代培养的激素组合和浓度
                                                     为 6 ̄BA 0.5 mg∙L +IBA 0.05 mg∙L ꎬ在此条件
                                                                                         ̄1
                                                                        ̄1
     7    WPM+6 ̄BA 4.0+IBA 0.4  40.2±5.3d  1.5±0.4b
                                                     下所诱导的再生芽以单芽为主ꎬ增殖系数偏低ꎬ为
     8    WPM +6 ̄BA 8.0+IBA 0.8  9.7±2.3f  1.0±0.4b
                                                     3.5 / 35 dꎬ但芽苗高壮ꎬ培养 35 dꎬ平均苗高为 6.0
                                               ̄1
   节剂浓度范围较宽ꎬ在 6 ̄BA 1. 0 ~ 4. 0 mg∙ L +               cm(表 3ꎬ图 1:CꎬD)ꎬ适用于生根前的壮苗培养ꎮ
   IBA 0.1 ~ 0.4 mg∙L 浓度范围内ꎬ初代芽诱导率均                  2.3.2 后续继代增殖培养研究  初步的继代增殖
                      ̄1
                                               ̄1     培养研究表明ꎬ相对适合于青钱柳继代增殖的培
   在 40.0% 以上ꎬ其中ꎬ以 MS + 6 ̄BA 2. 0 mg∙L +
                                                                                ̄1
   IBA 0.2 mg∙L 培养基的初代诱导效果最好ꎬ芽诱                      养基为 MS+6 ̄BA 0.5 mg∙L +IBA 0.05 mg∙L ꎬ
                                                                                                  ̄1
                  ̄1
   导率和芽苗高度均达到最高ꎬ分别为 80.5%和 3.5                       但增殖系数偏低ꎬ为 3.5 / 35 dꎮ 因此ꎬ在后续的继
   cm(表 2ꎬ图 1:A)ꎬ可以作为初代诱导培养基ꎮ                        代增殖培养研究中ꎬ在低浓度范围内ꎬ通过调整
   2.3 继代增殖及壮苗培养                                     6 ̄BA和 IBA 比例ꎬ并向培养基中添加 TIBAꎬ在有
   2.3.1 初步继代增殖培养研究  根据初代培养结                         效控制玻璃化的前提下ꎬ提高丛生芽的诱导率和
   果设计表 3 培养基ꎬ青钱柳初步继代增殖培养结                           增殖系数(表 4)ꎮ 通过综合分析ꎬ得到如下结果:
   果如下:(1)青钱柳比较适合在含有 6 ̄BA+IBA 或                          (1)经过多次继代培养后ꎬ培养基中的 6 ̄BA
   6 ̄BA+IAA 激素组合的培养基上生长ꎻ但在诱导丛                        浓度相对较高(1.0 mg∙L ) 时ꎬ再生芽苗长势偏
                                                                               ̄1
   生芽方 面ꎬ 前 者 优 于 后 者ꎮ ( 2) 当 6 ̄BA 浓 度 为             弱ꎬ玻璃化率高达 70%ꎬ增殖系数低ꎻ6 ̄BA 浓度过
                                                                   ̄1
                 ̄1                                   低(0.2 mg∙L )时ꎬ虽未出现玻璃化ꎬ 但芽苗普遍
   0.5~2.0 mg∙L 、IBA 或 IAA 浓度为 0.05~0.2 mg∙
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