Page 105 - 《广西植物》2020年第1期
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1 期                       廖咏梅等: 香蕉植株根区土壤的真菌多样性分析                                           1 0 1

   病植株根区土壤样品标记为 XJ1 ̄1ꎬ该地块的香蕉
   为种植后 6 个月ꎬ植株尚未开花ꎬ植株周围几乎无                          2  结果与分析
   绿色杂草ꎬ但是有枯死的杂草茎叶ꎬ香蕉行间用塑
   料膜覆盖防杂草及保湿土壤ꎻ地块二为三年生香                             2.1 香蕉根区土壤总 DNA 的 ITS2 区域高通量测
   蕉地ꎬ健康植株根区土壤样品标记为 XJ2 ̄0ꎬ枯萎                         序数据的统计
   病植株根区土壤样品标记为 XJ2 ̄1ꎬ该地块香蕉植                             对各香蕉植株根区土壤样品的总 DNA 进行
   株生长茂密ꎬ吸芽植株多ꎬ地面几乎没有杂草ꎬ但                            ITS2 区域测序ꎬ将各样本的原始数据分别进行拼
   是有较多的香蕉枯叶落叶覆盖ꎻ地块三为五年生                             接、过滤ꎬ获得的数据信息见表 1ꎮ 从所获的原始
   香蕉地ꎬ健康植株根区土壤样品标记为 XJ3 ̄0ꎬ枯                         序列(reads)数量和处理后剩余 reads 数量看出ꎬ在
   萎病植株根区土壤样品标记为 XJ3 ̄1ꎬ地面杂草                          同一宿根年限的土壤样品中ꎬ健康植株所获 reads
   多ꎬ主要以三叶鬼针草( Bidens pilosa) 为主ꎮ 自不                 数量均多于枯萎病植株ꎬ说明健康植株根区土壤

   同香蕉植株的东西南北四个方向ꎬ刮去 1 cm 表土ꎬ                        的真菌种群丰度更高ꎻ在香蕉健康植株的根区土
   挖开约 15 cm 的剖面ꎬ每个剖面自上而下采集根区                        壤中ꎬ随着香蕉宿根年限的增加ꎬ所获 reads 数量
   土壤样品约 500 gꎬ4 个方向的根区土壤混合均匀                        依次增加ꎬ其原因可能是随着香蕉宿根年限的增

   后分成 4 份ꎬ取其中一份带回实验室ꎬ保存于 4 ℃                        加ꎬ土壤被干扰程度依次降低ꎬ而使真菌的多样性
   冰箱中ꎮ                                              依次增加ꎻ但香蕉枯萎病植株根区土壤的 reads 数
   1.2 土壤样品的高通量测序与分析                                 量则没有规律性ꎬ可能原因是不同的因素导致香
       从带回实验室的香蕉根区土壤样品中ꎬ每个                           蕉植株生长衰弱ꎬ诱发枯萎病的发生ꎮ 根据所获
   样品 称 取 约 0. 5 g 土 壤ꎬ 用 BioFast 土 壤 基 因 组          序列数量绘制香农指数曲线(图 1)ꎬ从图 1 可以看
   DNA 提取试剂盒按照其说明书提取土壤微生物基                           出ꎬ所有样本均随着测序深度的增加趋向平坦ꎬ说

   因组 DNAꎬ经质检合格后ꎬ送生工生物工程(上海)                         明测序数据量足够ꎬ能够反映出样品中的物种组
   股份有限公司ꎬ针对土壤 DNA 中真菌的核糖体内                          成特征ꎮ
   转录 间 隔 区 ( Internal Transcribed Spacerꎬ ITS) 的    2.2 OTU 分析
   ITS2 区域(ITS3:5′ GCA TCG ATG AAG AAC GCA               使用 uparse 软 件 对 样 品 的 有 效 序 列 进 行 聚
   GC 3′ꎻITS4:5′ TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC          类ꎬ相似 性 ≥97% 的 tag 聚 为 同 一 OTUsꎬ 共 获 得
   3′)进行 PCRꎬ根据 PCR 产物浓度进行等浓度混                       3 419个 OTUsꎬ使用代表性序列与每个样品进行比
   样ꎬ充分混匀后用 2%的琼脂糖胶在 1 ×TAE 溶液                       较ꎬ将所有样品进行均一化处理之后绘制成韦恩
   中电泳 PCR 产物ꎬ割胶回收目标条带ꎬ用 Thermo                      图(Venn Graph)ꎬ分析不同样品之间共有和特有
   Scientific 公司的 GeneJET 胶回收试剂盒纯化 PCR               的 OTUsꎬ结果如图 2ꎬ发现所有样品共有的 OTUs
   产物ꎮ 使用 TruSeq  DNA PCR ̄Free Sample Prep ̄        为 19 个ꎮ 其中ꎬ一年生香蕉健康植株根区土壤样
   aration Kit 建库试剂盒构建文库ꎬ构建好的文库经                     品(XJ1 ̄0) 的特有的 OTUs 496 个ꎬ而枯萎病植株
   过 Qubit 定量和文库检测ꎬ合格后ꎬ使用 HiSeq2500                  根区土壤样品( XJ1 ̄1) 特有的 OTUs 为 406 个ꎬ两
   进行上机测序ꎮ                                           者相差 1.22 倍ꎻ三年生香蕉健康植株根区土壤样
       测序得到的原始数据( raw data)ꎬ存在一定比                    品(XJ2 ̄0) 的 OTUs 为 1 153 个ꎬ而枯萎病植株根
   例的干扰数据( dirty data)ꎮ 为了使信息分析的结                    区土壤样品( XJ2 ̄1) 特有的 OTUs 为 297 个ꎬ两者
   果更加准确、可靠ꎬ首先对原始数据进行拼接、过                            相差 3.88 倍ꎻ五年生香蕉健康植株根区土壤样品
   滤ꎬ得到有效数据(clean data)ꎻ然后基于有效数据                     (XJ3 ̄0)的 OTUs 为 571 个ꎬ而枯萎病植株根区土
   进行 OTUs( Operational Taxonomic Unitsꎬ操作分类         壤样品( XJ3 ̄1) 特有的 OTUs 为 477 个ꎬ两者相差
   单位)聚类和物种分类分析ꎬ结合 OTUs 和物种注                         1.19 倍ꎮ 可见ꎬ所有样品中ꎬ在同一宿根年限的香
   释ꎬ得到每个样品的 OTUs 和分类谱系的基本分析                         蕉植株中ꎬ健康植株根区土壤样品的 OTUs 数量均

   结果ꎻ最后对 OTUs 进行丰度、多样性指数等分析ꎬ                        大于枯萎病植株的根区土壤样品ꎬ进一步说明与
   同时对物种注释在各个分类水平上进行群落结构                             枯萎病植株相比ꎬ健康植株根区土壤的真菌种群

   的统计分析ꎮ                                            更丰富ꎻ一年生(种植后六个月)和五年生(土壤表
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