Page 27 - 《广西植物》2024年第10期
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10 期                 霍雯雯等: 红花檵木异常叶色现象与叶片内生细菌的相关性                                          1 8 2 9

            用于植物的生长发育而引起了其表型变化( Hou et
            al.ꎬ 2020)ꎮ 因此ꎬ明确红花檵木正常红色叶片和
            异常叶色叶片的微生物群落及多样性差异ꎬ有助
            于证明叶内细菌群落变化是因为叶色异常的“ 逆
            境”引起微生物变化的共同进化的结果ꎬ还是促使
            叶片异常叶色形成的诱因ꎬ并且从中还可筛选获

            得更多的优良菌种资源ꎮ
                 因此ꎬ本研究以红花檵木异常叶色和正常红

            色叶片为研究对象ꎬ采用平板分离培养法和 16S
            rDNA 序列分析法分离鉴定内生细菌ꎬ通过多样性
            分析、群落结构分析和功能细菌测定筛选结果比

            较不同叶色叶片的差异性ꎬ深入探讨以下问题:
            (1)红花檵木叶片的内生细菌多样性及群落结构
            特征ꎻ(2)红花檵木各叶色类型叶片的内生细菌种
            类及结构差异性ꎻ(3)红花檵木异常叶色现象下的
            叶片功能菌群转变ꎮ 以期获悉与红花檵木呈现异
            常叶色现象密切相关的微生物ꎬ为进一步明确红
                                                                A. 红花檵木正常红色(ZC)叶片ꎻ B. 红黄相间类型(HH)叶
            花檵木异常叶色的形成机制奠定基础ꎻ从叶片富
                                                                片ꎻ C. 黄绿相间类型(HL)叶片ꎻ D. 完全黄化类型(QH)叶
            集的内生细菌中发现功能菌ꎬ为后期的促生栽培                               片ꎻ E. 小叶类型(XY)叶片ꎻ F. 红斑类型(HB)叶片ꎮ
            提供宝贵菌种资源ꎮ                                           A. Normally red ̄colored leaf of L. chinense var. rubrum (ZC)ꎻ
                                                                B. Red and yellow leaf (HH)ꎻ C. Green and yellow leaf (HL)ꎻ
                                                                D. Completely yellowed leaf ( QH)ꎻ E. Smaller leaf ( XY)ꎻ
            1  材料与方法                                            F. Red ̄spotted leaf (HB).

                                                                  图 1  红花檵木异常叶色叶片与正常红色叶片
            1.1 材料                                                Fig. 1  Abnormal colored and normally red ̄colored
            1.1.1 植物材料   于湖南农业大学花卉基地发生                               leaves of Loropetalum chinense var. rubrum
            异常叶色现象较多的区域和其他未出现异常叶色
            现象的区域进行红花檵木‘大叶红’ 品种 5 种异常                          细菌长出以确保分离获得的为内生细菌ꎮ 将消毒
            叶色叶片和正常红色叶片的采集ꎬ植物材料如图 1                            后的 6 种类型叶片充分研磨进行不同浓度梯度
                                                                   ̄1
                                                                        ̄5
            所示ꎮ                                                (10 ~ 10 ) 稀释后分别吸取 100 μL 均匀涂布于
            1.1.2 培养基  内生细菌分离培养基:R A、NA 培                      R A 和 NA 平板培养基上ꎬ每个处理重复 3 次ꎬ28
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            养 基 ( Reasoner & Geldreichꎬ 1985ꎻ 郝 士 海ꎬ           ℃ 恒温培养 7 d 后ꎬ记录稀释平板上菌落形态特征
            1992)ꎮ 溶磷功能筛选鉴定培养基:溶磷培养基                           (大小、颜色、表面状态等)ꎬ根据菌落形态选取能
            (Solarbio)ꎮ 固氮功能筛选鉴定培养基:Ashby 无                    形成单菌落且菌落数最多的稀释梯度处理组计算
            氮培养基(Solarbio)ꎮ 产 IAA( Indole ̄3 ̄acetic acid)       生物量ꎬ挑取该稀释梯度培养的菌落纯化 3 次获
            筛选 鉴 定 培 养 基: King 氏 培 养 基 ( 林 国 钦 等ꎬ              得单菌落后转接至 R A、NA 试管斜面培养基中培
                                                                                  2
                                                          ̄1    养并编号ꎬ形成大量菌落后于 4 ℃ 保存用于后续
            2022)ꎬ其中 Salkowski 比色液配方为 0.5 molL
            FeCl 1.5 mL、H SO 30 mL、蒸馏水 50 mLꎮ                  细菌的分子鉴定确定其分类地位ꎮ 编号格式为
                3          2  4
            1.2 方法                                             “培养基类型+叶片类型+组内菌种序号”ꎮ
            1.2.1 叶片内生菌分离  分别称取 1 g 红花檵木正                      1.2.2 内生细菌总 DNA 提取与鉴定  采用煮沸法
            常红色和异常叶色叶片ꎬ自来水冲洗干净ꎬ75%乙                            (Perez ̄Montano et al.ꎬ 2014) 提 取 菌 株 的 基 因 组
            醇浸泡 30 sꎬ0.1% HgCl 消毒处理 8 minꎬ用无菌水                 DNAꎬ利用 16S 通用引物 27F(5′ ̄AGAGTTTGATCC
                                  2
            冲洗 5 次ꎬ将最后 1 次冲洗过叶片的无菌水作为空                         TGGCTCAG ̄3′)和 1492R (5′ ̄GGT ̄TACCTTGTTAC
            白对照涂布于灭菌的培养基上ꎬ后期观察是否有                              GACTT ̄3′)扩增 16S rDNA 基 因 序 列ꎮ PCR 反 应
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