Page 17 - 《广西植物》2025年第4期
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4 期 李海清等: 滇牡丹花瓣色斑形成的分子机制研究 6 3 1
参基因ꎬ 采 用 TRANS BIOTECH 试 剂 盒 ( 货 号 为
AQ601)并按照说明书进行实验ꎬ在 7500Real ̄time
PCR 仪器中进行 3 次生物学重复 qRT ̄PCR 检测ꎬ
-△△Ct
再通过 2 分析来估算其表达水平ꎮ
表 1 特异性引物和内参引物
Table 1 Specific primers and internal reference primers
引物名称
引物序列 (5′ ̄3′) 用途
Primer
Primer sequence (5′ ̄3′) Usage
name
PdMYB30 F: GAAGCCTCTCAGGCCGTATC qRT ̄PCR
R: AGCACCATCATCGAAGAGCC
PdCHI F: CAGACGCCAGAGGGATCATT qRT ̄PCR
NB ̄S1. 无色斑黄花硬蕾期ꎻ NB ̄S2. 无色斑黄花盛开期ꎻ
R: TTGCTTCCGGAGAAACACCA
B ̄S1. 红色斑黄花硬蕾期ꎻ B ̄S2. 红色斑黄花盛开期ꎮ
PdCHS F: GTGTGCTTAGCGAGTACGGT qRT ̄PCR
NB ̄S1. Yellow flower without colour spot bud stageꎻ NB ̄S2.
Yellow flower without colour spot blooming stageꎻ B ̄S1. Yellow R: TGGAGCACCACAGTCTCAAC
flower with red spot bud stageꎻ B ̄S2. Yellow flower with red spot PdDFR F: GCCATCCATGCCACCTAGTC qRT ̄PCR
blooming stage.
R: TAGCGACCCTCTGCTTTTGG
图 1 滇牡丹花色表型 Actin F: GGACAAGTCATTACCATCGGA qRT ̄PCR
Fig. 1 Flower color phenotype of Paeonia delavayi R: CTGATATCCACATCACACTTCATG
(https: / / www. arabidopsis. org / index. jsp) 下载拟 南
芥 MYB 转录因子氨基酸序列ꎬ同 PdMYB30 进行 2 结果与分析
系统发育分析来预测其功能ꎮ 借助转录因子差异
基因表达热图ꎬ将与色斑形成相关的结构基因和 2.1 转录组测序质量分析
通过对 2 种表型植株花瓣 2 个发育时期转录
转录因子进行聚类分析ꎮ
基 于 NCBI 的 BLAST 结 果ꎬ 选 择 了 与 组数据分析显示ꎬ无色斑黄色花硬蕾期花瓣( NB ̄
PdMYB30 氨基酸同源性较高的物种序列进行多重 S1)、无色斑黄色花盛开期花瓣( NB ̄S2)、红色斑
序列对比分析ꎬ并使用 DNAMAN 6.0.3.99 软件对 黄色花硬蕾期花瓣(B ̄S1) 和红色斑黄色花盛开期
PdMYB30(Mix ̄74_transcript_142862) 和其他植物 花瓣(B ̄S2) 的基因读数、基数、GC 含量等为 3 个
的一 些 与 花 青 素 生 物 合 成 及 色 斑 形 成 相 关 的 生物学 重 复 测 序 的 最 小 值 到 最 大 值 的 范 围 ( 表
2)ꎬ共获得 15 Gb 的高质量数据ꎬ经过去除冗余后
R2R3 ̄MYB 蛋白进行了多序列比对ꎮ 通过 MEGA
11.0 软件构建系统发育树ꎬ并采用 bootstrap 方法 剩余230 447 987干净读数( clean reads)ꎬGC 含量
范围为 44.32% ~ 45.32%ꎮ 此外ꎬQ20 碱基均不低
进行了检验ꎬ测试次数为 1 000 次ꎮ
1.7 影响色斑形成相关基因实时 qRT ̄PCR 分析 于 98.08%ꎬQ30 碱基不低于 94.32%ꎬ表明测序质
为了验证滇牡丹测序数据的每百万个映射读 量良好ꎬ干净数据(clean data)质量符合要求ꎬ数据
取的 转 录 本 每 千 碱 量 片 段 数 ( fragments per kilo 可信度高ꎮ
bases of transcripts read per million mapsꎬ FPKM)的 通过 Trinity 软件分析ꎬ共获得 63 981 个单基
准确性ꎬ选取类黄酮生物合成通路中差异表达的 因ꎬ包含 35 164 323 个碱基ꎬN50 长度为 991 bpꎬ
关键结构基因和转录因子在 2 种表型的滇牡丹植 其中最短的为 175 bpꎬ最长的为 4 378 bpꎬ平均长
株花瓣的 2 个时期进行实时荧光定量 PCR( qRT ̄ 度为 805 bpꎮ
PCR)分析ꎮ cDNA 合成采用 AQ601( 北京全式金 2.2 代谢物分析
生物技术股份有限公司) 试剂盒ꎮ 采用 TBtools 进 为了探究滇牡丹种间色斑形成的原因ꎬ用同
行特异性引物设计(表 1)ꎮ 滇牡丹所选 Actin 为内 时采集的 2 种表型植株 3 个生物学重复的实验材

