Page 36 - 《广西植物》2025年第6期
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１ ０ ２ ２ 广 西 植 物 ４５ 卷
表 １ 植被恢复样地基本信息
Ｔａｂｌｅ １ Ｂａｓｉｃ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｖｅｇｅｔａｔｉｏｎ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｐｌｏｔ
采样地点 坡度 海拔
土地利用类型 经度 纬度 土壤类型 坡向
Ｓａｍｐｌｉｎｇ Ｓｌｏｐｅ Ａｌｔｉｔｕｄｅ
Ｌａｎｄ ｕｓｅ ｔｙｐｅ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ Ｌａｔｉｔｕｄｅ Ｓｏｉｌ ｔｙｐｅ Ａｓｐｅｃｔ
ｓｉｔｅ (°) (ｍ)
１ 耕地 １０５°３６′３６″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 ２４.８９２ １ 西 ７５８
Ｃｒｏｐｌａｎｄ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｗｅｓｔ
花椒林 １０５°３６′３６″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 ２８.１０１ ５ 西南 ７５４
Ｚａｎｔｈｏｘｙｌｕｍ ｂｕｎｇｅａｎｕｍ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ
天然次生林 １０５°３６′３６″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 ２５.３２３ ８ 西北 ７３８
Ｎａｔｕｒａｌ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ
２ 耕地 １０５°３７′１２″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 １７.６３１ １ 西南 ８４２
Ｃｒｏｐｌａｎｄ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ
花椒林 １０５°３７′１２″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 １６.１８４ ６ 西南 ８４６
Ｚａｎｔｈｏｘｙｌｕｍ ｂｕｎｇｅａｎｕｍ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ
天然次生林 １０５°３７′１２″ Ｅ ２５°４２′００″ Ｎ 石灰土 １４.５６７ ５ 西南 ８２０
Ｎａｔｕｒａｌ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ
３ 耕地 １０５°３８′２４″ Ｅ ２５°４１′２４″ Ｎ 石灰土 １５.９８０ ７ 南 ７３５
Ｃｒｏｐｌａｎｄ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈ
花椒林 １０５°３８′２４″ Ｅ ２５°４１′２４″ Ｎ 石灰土 １１.７０８ ６ 东南 ７３１
Ｚａｎｔｈｏｘｙｌｕｍ ｂｕｎｇｅａｎｕｍ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈｅａｓｔ
天然次生林 １０５°３８′２４″ Ｅ ２５°４１′２４″ Ｎ 石灰土 １１.３２９ ０ 南 ７３９
Ｎａｔｕｒａｌ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｆｏｒｅｓｔ Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｓｏｉｌ Ｓｏｕｔｈ
及有机碳测定ꎮ 土壤微生物样品使用经过消毒灭 土 壤 ＥＯＣ 含 量 测 定 采 用 ３３３ ｍｍｏｌ Ｌ ￣１
菌处理的铲子和手套进行采集ꎬ分别采集表层 ０ ~ ＫＭｎＯ 氧化比色法( Ｃａｍｂａｒｄｅｌｌａ ＆ Ｅｌｌｉｏｔｔꎬ １９９２):
４
１０ ｃｍ 和 １０ ~ ２０ ｃｍ 的土壤大约 ２５ ｇ 并装入灭菌 称取过 ０.２５ ｍｍ 筛的风干土样放入 ５０ ｍＬ 离心管
离心管ꎬ使用便携式冰箱当天运回实验室ꎬ并于 中ꎬ加入 ２５ ｍＬ ３３３ ｍｍｏｌＬ ＫＭｎＯ 溶液后于振
￣１
４
－８０ ℃ 冷冻保存待用于土壤微生物分析ꎮ 本研究 荡机上振荡 １ ｈꎬ同时进行空白试验ꎬ３ 次重复ꎮ 振
选取耕地土壤作为对照ꎬ以自然恢复的次生林、人 荡后样品离心 ５ ｍｉｎ(４ ０００ ｒ ｍｉｎ )ꎬ取上清液用
￣１
工恢复花椒林的土壤为研究对象(图 １)ꎮ 去离子水按 １ ∶ ２５０ 稀释ꎮ 用分光光度计在 ５６５
１.３ 分析方法 ｎｍ 波长处进行比色ꎬ根据消耗的 ＫＭｎＯ 量和不含
４
１.３.１ 土壤有机碳及组分变化分析 土壤样品研磨 土壤的空白组进行比较ꎬ计算土壤 ＥＯＣ 含量ꎮ
￣１ １.３.２ 土壤微生物( 细菌和真菌) 群落分析 微生
过 ０.２５ ｍｍ 筛后用稀 ＨＣｌ(４ ｍｏｌＬ )去除无机碳ꎬ
®
使用 元 素 分 析 仪 － 稳 定 同 位 素 质 谱 仪 ( Ｖａｒｉｏ 物 ＤＮＡ 提取和测定:根据 ＦａｓｔＤＮＡ Ｓｐｉｎ Ｋｉｔ ( ＭＰ
ＩＳＯＰＯＴＥ Ｃｕｂｅ￣ＩｓｏｐｒｉｍｅꎬＥｌｅｍｅｎｔａｒ 公司ꎬ德国)测定 ＢｉｏｍｅｄｉｃａｌｓꎬＵｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ) ＤＮＡ 抽提试剂盒进行
ＳＯＣ 含量ꎮ 参照 Ｃａｍｂａｒｄｅｌｌａ 和 Ｅｌｌｉｏｔｔ(１９９２) 的方 微生物群落总 ＤＮＡ 抽提ꎬ利用 １％琼脂糖凝胶电
法测定 ＰＯＣ 和 ＭＯＣ 的含量ꎬ具体操作如下:称取过 泳检测 ＤＮＡ 质量(电压 ５ Ｖｃｍ ꎬ时间 ２０ ｍｉｎ)ꎬ
￣１
２ ｍｍ 筛的风干土样共 ２０ ｇꎬ放入 ２５０ ｍＬ 三角瓶中ꎬ ＤＮＡ 浓 度 和 纯 度 使 用 紫 外 分 光 光 度 计
￣１
加入六偏磷酸钠(５ ｇＬ ) 共 ６０ ｍＬꎬ手摇 １０ ~ １５ ＮａｎｏＤｒｏｐ２０００ ( Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃꎬ ＵＳ) 进行
ｍｉｎ 后放入往复式振荡器(１８ ℃ꎬ９０ ｒｍｉｎ )上振 测定ꎮ
￣１
荡 １８ ｈꎬ将分散液过 ５３ μｍ 筛后用去离子水洗至筛 Ｉｌｌｕｍｉｎａ Ｍｉｓｅｑ 测 序: 选 用 前 引 物 ３３８Ｆ ( ５′￣
下水澄清ꎬ筛上部分为颗粒有机质ꎬ分离后于铝盒 ＡＣＴＣＣＴＡＣＧＧＧＡＧＧＣＡＧＣＡＧ￣３′) 和 后 引 物 ８０６Ｒ
中 ８０ ℃烘干 ２４ ｈ 后进行称量并计算其占全土的百 (５′￣ＧＧＡＣＴＡＣＨＶＧＧＧＴＷＴＣＴＡＡＴ￣３′) 对土壤细菌
分比ꎬ随后研磨过 ０.１４９ ｍｍ 筛ꎬ取适当重量样品测 １６Ｓ ｒＲＮＡ 基因 Ｖ３ －Ｖ４ 区进行扩增ꎬ选用前引物
定 ＳＯＣ 含量ꎬ乘以其所占全土的百分比得出 ＰＯＣ ＩＴＳ１Ｆ( ＣＴＴＧＧＴＣＡＴＴＴＡＧＡＧＧＡＡＧＴＡＡ) 和后引物
含量ꎮ 筛下部分( <５３ μｍ) 为矿物结合有机质ꎬ其 ＩＴＳ２Ｒ( ＧＣＴＧＣＧＴＴＣＴＴＣＡＴＣＧＡＴＧＣ) 对 土 壤 真 菌
ＭＯＣ 含量为 ＳＯＣ 含量与 ＰＯＣ 含量之差ꎮ ＩＴＳ１－ＩＴＳ２ 区进行 ＰＣＲ 扩增ꎮ 将同一样本的 ＰＣＲ
