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作者简介:

李丽(1998-),硕士研究生,主要从事药效物质基础与质量控制技术研究,(E-mail)2695215038@qq.com。

通讯作者:

王永林,博士生导师,教授,主要从事中药新技术、新工艺研究与新药研究开发,(E-mail)gywyl@gmc.edu.cn。

中图分类号:Q943

文献标识码:A

文章编号:1000-3142(2023)06-1114-10

DOI:10.11931/guihaia.gxzw202204085

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目录contents

    摘要

    杏叶防风(Pimpinella candolleana)为贵州苗族习用草药,用于黄疸型肝炎、急性胆囊炎等病症的治疗。为探究杏叶防风的化学成分及其抗炎活性,该研究采用硅胶、凝胶、ODS等色谱技术对杏叶防风全草70%乙醇提取物进行分离纯化,通过NMR、MS等波谱数据鉴定化合物结构,采用脂多糖(LPS)诱导的RAW264.7巨噬细胞作为炎症模型,评价单体化合物的抗炎活性。结果表明:(1)从杏叶防风中分离并鉴定了20个化合物,分别为香草醛 (1)、芝麻素 (2)、2-甲基-2-羟基-5-甲氧基苯并 [d] 氢化呋喃-3-酮 (3)、原儿茶醛 (4)、1,5-dihydroxy-2,3-dimethoxyxanthone (5)、异鼠李素 (6)、山奈酚 (7)、8-羟基-2-甲基色原酮 (8)、木犀草素 (9)、槲皮素 (10)、1-O-β-D-葡萄糖-(2S,3S,4R,8E)-2- [(2′R)-2′-羟基棕榈酰胺]-8-十八烯-1,3,4-三醇 (11)、异鼠李素-3-O-β-D-半乳糖苷 (12)、异槲皮苷 (13)、去甲当药醇苷 (14)、木犀草素-6-C-α-L-阿拉伯糖苷 (15)、山奈酚-3-O-β-D-半乳糖苷 (16)、山奈酚-7-O-β-D-葡萄糖苷 (17)、木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷 (18)、异牡荆苷 (19)、芦丁 (20)。其中,化合物134671013161820均为首次从该植物中分离得到。(2)抗炎结果显示,化合物2-10121819均可显著抑制 LPS 诱导 RAW264.7 细胞NO释放量(P<0.05,P<0.01),其中化合物471018在浓度为25 μmol·L-1时,抑制率分别为57.37%、83.60%、68.16%、81.14%。该研究丰富了杏叶防风的化学成分,明确了黄酮类化合物是其发挥抗炎功效的活性成分,为杏叶防风的进一步研究与开发利用提供了一定的依据。

    Abstract

    Pimpinella candolleana is known as Miao ethnic herbal medicine in Guizhou for the treatment of icteric hepatitis, acute cholecystitis and other diseases. To investigate the chemical constituents of P. candolleana and their anti-inflammatory activities, the chemical constituents from the 70% ethanol extract of P. candolleana were separated by silica gel, Sephadex LH-20, Toyopearl HW-40F, Toyopearl HW-40C, ODS and other column chromatography technologies, and their structures were elucidated by extensive spectroscopic analysis such as nuclear magnetic resonance (NMR) and mass spectrum (MS). The inflammatory cell model, built by LPS-induced RAW264.7 macrophage cells, was used to evaluate the anti-inflammatory activity. The results were as follows: (1) Twenty compounds from P. candolleana were isolated and identified of including vanillin (1), sesamin (2), 2-methyl-2-hydroxy-5-methoxy berz (d) hydrofuran-3-one (3), procatechin (4), 1,5-dihydroxy-2,3-dimethoxyxanthone (5), isorhamnetin (6), kaempferol (7), 8-hydroxy-2-methylchromone (8), luteolin (9), quercetin (10), 1-O-β-D-glucopyranosyl-(2S,3S,4R,8E)-2-[(2′R)-2′-hydroxypalmitoylamino]-8-octadecene-1,3,4-triol (11), isorhamnetin-3-O-β-D-galactopyranoside (12), isoquercitrin (13), norswertianolin (14), luteolin-6-C-α-L-arabinoside (15), kaempferol-3-O-β-D-galactopyranoside (16), kaempferol-7-O-β-D-glucopyranoside (17), luteolin-7-O-β-D-glucopyranoside (18), isovitexin (19), rutin (20). Compounds 1, 3, 4, 6, 7, 10, 13, 16, 18, and 20 were obtained from this plant for the first time. (2) The anti-inflammatory results showed that compounds 2-10, 12, 18 and 19 could significantly inhibit the LPS-induced NO content in RAW264.7 cells (P<0.05, P<0.01), and the inhibition rates of compounds 4, 7, 10, and 18 at a concentration of 25 μmol·L-1 were 57.37%, 83.60%, 68.16%, 81.14%, respectively. Overall, this study enriches the chemical constituents of P. candolleana, and clarifies that flavonoids are the active ingredients in the course of anti-inflammatory, which provides a theoretical reference for further research and exploitation of P. candolleana.

  • 杏叶防风(Pimpinella candolleana)为伞形科(Umbelliferae)茴芹属(Pimpinella L.)多年生草本植物,又名杏叶茴芹、山当归、骚羊古、蜘蛛香等,为贵州民间常用草药之一,收载于《贵州省中药材、民族药材质量标准》(2003版)中,广泛分布在我国广西及西南一带。其味辛、微苦、性温,归肝、肺、脾、胃经,以全草入药用于治疗上腹部疼痛、消化不良、痢疾和蛇咬伤等(危英等,2005;赵超等,2007),在许多地方药志中均有记载,如《贵阳民间药草》述其“温中散寒止痛,治中寒、发痧、胃痛、腹痛”,《四川中药志》记载其“消食健脾,截疟;用于中寒腹痛、寒疝偏坠、风湿痹痛、脾虚食滞和疟疾;近有用于治淋巴结结核”。近年来该药已被研制用于治疗慢性乙型肝炎、脂肪乳致静脉炎等复方制剂(曾德祥,2007;孙霞,2016)。目前,杏叶防风已分离鉴定的化学成分主要有黄酮类、甾醇类及挥发油类等(梁光义等,2003;常星,2011;邢煜君等,2011),有关杏叶防风化学成分文献报道较少,对其化学成分的活性研究更少,除已报道的α-葡萄糖苷酶抑制活性、抗氧化活性及抗菌活性外(Chang &Kang,2012),未见该植物其他药理作用的有关报道,其抗炎物质基础不明确。因此,为深入了解杏叶防风化学成分,探究其抗炎活性物质,本研究对杏叶防风全草70%乙醇提取物进行分离纯化,分离并鉴定了20个化合物,并对其中的18个化合物进行了抗炎活性测定,以期为杏叶防风的深入研究和开发利用提供科学依据。

  • 1 仪器与材料

  • 1.1 材料

  • 药材:杏叶防风药材采收于贵州花溪高坡,经贵州中医药大学药学院孙庆文教授鉴定为伞形科茴芹属植物杏叶防风(Pimpinella candolleana)的干燥全草。其凭证样品(20190901)保存于贵州省药物制剂重点实验室。

  • 细胞株:小鼠单核巨噬细胞RAW264.7购自ATCC中心。

  • 1.2 仪器

  • JEOL-ECS 400 MHz核磁共振波谱仪(日本电子株式会社);Bruker AV-600型超导核磁共振仪(德国Bruker公司);ACQUITY-UPLC-TQD超高液相色谱-三重四极杆串联质谱仪(美国Waters公司);CO2细胞培养箱(Thermo scientific公司);Varioskan LUX多功能酶标仪(美国Thermo公司);TS100倒置显微镜(日本Nikon公司)。

  • 1.3 试剂

  • D-101型大孔树脂(天津市海光化工有限公司);柱层析硅胶、薄层层析硅胶(青岛海洋化工有限公司);葡聚糖凝胶Sephadex LH-20(瑞士Pharmacia Biotech公司);Toyopearl HW-40C凝胶、Toyopearl HW-40F凝胶(日本东曹株式会社);ODS(日本YMC公司);试剂均为分析纯。

  • 胎牛血清FBS、DMEM 高糖培养基(美国Gibco公司);脂多糖(LPS)、青链霉素混合液、二甲基亚砜、PBS缓冲液(北京Solarbio科技有限公司);CCK-8试剂盒(美国Glpbio公司);NO试剂盒(南京建成生物工程研究所);地塞米松(DEX,上海甄准生物科技有限公司)。

  • 2 实验方法

  • 2.1 提取与分离

  • 取干燥的杏叶防风全草(12 kg)切成粗段,用70%乙醇加热回流提取3次,合并提取液,减压回收溶剂得浸膏(1.3 kg),过D-101大孔吸附树脂,用水(2倍柱体积)、80%乙醇(5倍柱体积)依次洗脱,得水段浸膏(972 g)、80%乙醇段浸膏(530 g)。80%乙醇段经正相硅胶柱层析,以二氯甲烷-甲醇(7∶3→6∶4)进行等度洗脱,回收溶剂,浓缩后得干浸膏290 g,经正相硅胶柱层析,以石油醚-乙酸乙酯(10∶0→0∶10)、乙酸乙酯-甲醇(10∶0→7∶3)进行梯度洗脱,分段收集,各段进行TLC检测合并后浓缩,得到10个组分(Fr.1-10)。

  • Fr.4过正相硅胶柱,以石油醚-二氯甲烷(3∶1→0∶1)、二氯甲烷-甲醇(70∶1→20∶1)梯度洗脱,TLC检测合并后浓缩,得到7个组分(Fr.4.1-4.7)。其中,Fr.4.3反复过Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇 1∶1)、Toyopearl HW-40F(甲醇),得化合物1(10.5 mg)、化合物2(7.0 mg)。Fr.4.5反复过正相硅胶、Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇 1∶1)、Sephadex LH-20(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇),得化合物3(30.0 mg)。

  • Fr.5过Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇 1∶1),TLC检测合并后浓缩,得到5个组分(Fr.5.1-5.5)。其中,Fr.5.2反复过Toyopearl HW-40F(甲醇)、Sephadex LH-20(甲醇),得化合物4(10.0 mg)、化合物5(24.4 mg)。Fr.5.4过Toyopearl HW-40F(甲醇)、Sephadex LH-20(甲醇),得化合物6(10.0 mg)。Fr.5.5过Toyopearl HW-40F(甲醇),得化合物7(17.0 mg)。

  • Fr.6过Sephadex LH-20(甲醇),TLC检测合并后浓缩,得到5个组分(Fr.6.1-6.5)。其中,Fr.6.2过Toyopearl HW-40C(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇)、Sephadex LH-20(50%丙酮水)、ODS柱色谱(20%~50%甲醇水),得化合物8(11.0 mg)。Fr.6.4过Toyopearl HW-40C(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇)、Sephadex LH-20(甲醇),得化合物9(80.0 mg)。Fr.6.5过Toyopearl HW-40F(甲醇),得化合物10(87.0 mg)。

  • Fr.8过正相硅胶,以二氯甲烷-甲醇(20∶1→3∶1)进行梯度洗脱,得到6个组分(Fr.8.1-8.6)。Fr.8.4过Toyopearl HW-40C(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇)、Toyopearl HW-40F(二氯甲烷-甲醇1∶1)、ODS柱色谱(20%~40%甲醇水)、Sephadex LH-20(甲醇)、Sephadex LH-20(50%丙酮水),得化合物11(150.0 mg)、化合物12(44.0 mg)、化合物13(36.4 mg)。Fr.8.5过Toyopearl HW-40C(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇)、ODS柱色谱(20%~60%甲醇水)、Sephadex LH-20(甲醇)、Sephadex LH-20(50%丙酮水),得化合物14(5.2 mg)、化合物15(3.7 mg)、化合物16(7.0 mg)、化合物17(2.7 mg)。

  • Fr.9过Sephadex LH-20(甲醇),得到2个组分(Fr.9.1-9.2)。其中,Fr.9.2过Toyopearl HW-40C(甲醇)、Toyopearl HW-40F(甲醇)、Sephadex LH-20(50%丙酮水)、正相硅胶柱、二氯甲烷-甲醇(8.5∶1.5),得化合物18(26.0mg)、19(25.0 mg)、化合物20(87.0 mg)。

  • 2.2 抗炎活性评价

  • 取对数生长期的RAW264.7细胞,调整细胞浓度为每毫升3×105个,每孔100 μL接种于96孔板中,置于37℃、5% CO2的培养箱中培养24 h。实验设置空白组、模型组、阳性对照组和给药组,每组设置3个复孔,阳性对照为地塞米松(DEX)。空白组和模型组加入完全培养基,阳性对照组加入终浓度为25 μmol·L-1 DEX,给药组加入安全浓度范围内的化合物。培养3 h后,除空白组外,其他组均加入终浓度为0.25 μg·mL-1的LPS,培养24 h后收集上清液,按NO检测试剂盒说明书测定上清液NO水平,重复3次实验。按公式(1)计算NO含量,按公式(2)计算NO抑制率。

  • NOμmolL-1=OD测定 -OD空白 /OD -OD空白 ×(20 μmol·L-1)× (4 )
    (1)
  • NO(%)= ( NO 含量 LPS-NO 含量 样品) / ( NO 含量 LPS-NO 含量 ) ×100%
    (2)
  • 2.3 统计学分析

  • 采用SPSS 22.0和GraphPad Prism 8.0软件进行数据的分析处理,组间差异比较采用单因素方差分析(one-way ANOVA)进行比较,两组间比较采用LSD法,检验水准P<0.05为有统计学意义。

  • 3 结构鉴定

  • 化合物 1:白色针状结晶。ESI-MS m/z: 153 [M+H]+,分子式C8H8O31H-NMR(600 MHz,CDCl3δ: 9.80(1H,s,H-7),7.40(1H,overlap,H-6),7.40(1H,overlap,H-2),7.02(1H,d,J=8.4 Hz,H-5),6.24(1H,brs,-OH),3.94(3H,s,-OCH3); 13C-NMR(150 MHz,CDCl3δ: 191.1(C-7),151.9(C-3),147.4(C-4),130.1(C-1),127.8(C-6),114.6(C-5),109.0(C-2),56.3(-OCH3)。以上数据与文献(陈美安和甄丹丹,2020)基本一致,故鉴定该化合物为香草醛。

  • 化合物 2:白色针状结晶。分子式C20H18O61H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 6.92(2H,d,J=1.6 Hz,H-2,2′),6.86(2H,d,J=8.0 Hz,H-5,5′),6.83(2H,dd,J=8.0,1.6 Hz,H-6,6′),5.99(4H,s,2×OCH2O),4.64(2H,d,J=4.4 Hz,H-7,7′),4.11(2H,m,H-9a,9′a),3.75(2H,dd,J=9.2,4.4 Hz,H-9b,9′b),2.99(2H,m,H-8,8′); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 147.4(C-4,4′),146.5(C-3,3′),135.5(C-1,1′),119.4(C-5,5′),108.0(C-6,6′),106.6(C-2,2′),100.9(2×OCH2O),84.9(C-7,7′),71.0(C-9,9′),53.8(C-8,8′)。以上数据与文献(吴美婷等,2021)基本一致,故鉴定该化合物为芝麻素。

  • 化合物 3:白色粉末。ESI-MS m/z: 193 [M–H]-,分子式C10H10O41H-NMR(400 MHz,CD3OD)δ: 7.31(1H,dd,J=9.2,2.8 Hz,H-6),7.07(1H,d,J=2.8 Hz,H-4),7.00(1H,d,J=9.2 Hz,H-7),3.79(3H,s,5-OCH3),1.52(3H,s,CH3); 13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δ: 202.1(C-3),167.1(C-9),156.6(C-5),129.9(C-6),119.8(C-8),115.5(C-7),106.1(C-4),105.9(C-2),56.5(5-OCH3),22.2(-CH3)。以上数据与文献(石慧丽等,1998)基本一致,故鉴定该化合物为2-甲基-2-羟基-5-甲氧基苯并 [d] 氢化呋喃-3-酮。

  • 化合物 4:白色粉末。ESI-MS m/z: 139 [M+H]+,分子式C7H6O31H-NMR(600 MHz,CD3OD)δ: 9.67(1H,s,H-7),7.30(1H,dd,J=7.8,1.8 Hz,H-6),7.29(1H,d,J=1.8 Hz,H-2),6.89(1H,d,J=7.8 Hz,H-5); 13C-NMR(150 MHz,CD3OD)δ: 193.2(C-7),154.7(C-3),147.5(C-4),130.6(C-1),126.8(C-6),116.5(C-5),115.3(C-2)。以上数据与文献(杨超等,2021)基本一致,故鉴定该化合物为原儿茶醛。

  • 化合物 5:黄色粉末。ESI-MS m/z: 289 [M+H]+,分子式C15H12O61H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.75(1H,s,1-OH),10.51(1H,brs,5-OH),7.54(1H,dd,J=7.8,1.2 Hz,H-8),7.31(1H,dd,J=7.8,1.2 Hz,H-6),7.25(1H,t,J=7.8 Hz,H-7),6.75(1H,s,H-4),3.95(3H,s,3-OCH3),3.74(3H,s,2-OCH3); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 180.8(C-9),160.0(C-3),153.2(C-1),152.7(C-4a),146.3(C-5),145.0(C-4b),131.1(C-2),124.2(C-7),120.6(C-8a),120.5(C-6),114.4(C-8),103.2(C-8b),91.4(C-4),60.1(2-OCH3),56.5(3-OCH3)。以上数据与文献(Yuan et al.,2006)基本一致,故鉴定该化合物为1,5-dihydroxy-2,3-dimethoxyxanthone。

  • 化合物 6:黄色粉末。ESI-MS m/z: 317 [M+H]+,分子式C16H12O71H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.46(1H,s,5-OH),7.75(1H,d,J=1.8 Hz,H-2′),7.68(1H,dd,J=8.4,1.8 Hz,H-6′),6.94(1H,d,J=8.4 Hz,H-5′),6.46(1H,d,J=1.8 Hz,H-8),6.18(1H,d,J=1.8 Hz,H-6),3.84(3H,s,3′-OCH3); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 175.9(C-4),164.3(C-7),160.7(C-5),156.2(C-9),148.8(C-4′),147.4(C-3′),146.5(C-2),135.9(C-3),122.0(C-1′),121.7(C-6′),115.5(C-5′),111.7(C-2′),102.9(C-10),98.3(C-6),93.6(C-8),55.8(3′-OCH3)。以上数据与文献(董丽华等,2019)基本一致,故鉴定该化合物为异鼠李素。

  • 化合物 7:黄色粉末。ESI-MS m/z: 287 [M+H]+,分子式C15H10O61H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.47(1H,s,5-OH),8.04(2H,d,J=9.0 Hz,H-2′,6′),6.93(2H,d,J=9.0 Hz,H-3′,5′),6.44(1H,d,J=2.4 Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.4 Hz,H-6); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 175.9(C-4),163.9(C-7),160.7(C-5),159.2(C-4′),156.2(C-9),146.8(C-2),135.7(C-3),129.5(C-2′,6′),121.7(C-1′),115.4(C-3′,5′),103.0(C-10),98.2(C-6),93.5(C-8)。以上数据与文献(Jung et al.,2003)基本一致,故鉴定该化合物为山奈酚。

  • 化合物 8:白色粉末。ESI-MS m/z: 177 [M+H]+,分子式C10H8O31H-NMR(400 MHz,C5D5N)δ: 7.98(1H,dd,J=8.0,1.6 Hz,H-5),7.44(1H,dd,J=8.0,1.6 Hz,H-7),7.29(1H,t,J=8.0 Hz,H-6),6.28(1H,s,H-3),2.05(3H,s,2-CH3); 13C-NMR(100 MHz,C5D5N)δ: 178.4(C-4),166.3(C-2),148.6(C-10),147.5(C-8),126.0(C-9),125.8(C-7),120.2(C-6),115.5(C-5),111.1(C-3),20.4(2-CH3)。以上数据与文献(王洪玲等,2011)基本一致,故鉴定该化合物为8-羟基-2-甲基色原酮。

  • 化合物 9:黄色粉末。ESI-MS m/z: 287 [M+H]+,分子式C15H10O61H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.33(2H,m,H-2′,6′),6.84(1H,d,J=8.8 Hz,H-5′),6.51(1H,s,H-3),6.35(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.10(1H,d,J=2.0 Hz,H-6); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 181.0(C-4),166.8(C-2),163.7(C-7),161.3(C-5),157.4(C-9),151.3(C-4′),146.3(C-3′),120.4(C-1′),118.7(C-6′),115.9(C-5′),112.6(C-2′),102.6(C-10),102.0(C-3),99.4(C-6),94.1(C-8)。以上数据与文献(陈林等,2018)基本一致,故鉴定该化合物为木犀草素。

  • 化合物 10:黄色粉末。ESI-MS m/z: 303 [M+H]+,分子式C15H10O71H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 12.50(1H,s,5-OH),7.68(1H,d,J=2.4 Hz,H-2′),7.54(1H,dd,J=8.4,2.4 Hz,H-6′),6.89(1H,d,J=8.4 Hz,H-5′),6.41(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.0 Hz,H-6); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 175.9(C-4),163.9(C-7),160.8(C-9),156.2(C-5),147.7(C-4′),146.8(C-2),145.1(C-3′),135.8(C-3),122.0(C-1′),120.0(C-6′),115.6(C-2′),115.1(C-5′),103.0(C-10),98.2(C-6),93.4(C-8)。以上数据与文献(王晓阳等,2020)基本一致,故鉴定该化合物为槲皮素。

  • 化合物 11:白色无定型粉末。ESI-MS m/z: 732 [M+H]+,分子式C40H77NO101H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.54(1H,d,J=9.2 Hz,N-H),5.34(2H,m,H-8,9),4.13(1H,d,J=7.6 Hz,H-1″),4.08(1H,m,H-2),3.83(1H,m,H-1b),3.82(1H,m,H-2′),3.66(1H,m,H-6″b),3.64(1H,m,H-1a),3.42(1H,m,H-6″a),3.39(2H,m,H-3,4),1.22 [s,(CH2)n],0.84(6H,t,J=6.8 Hz,2×CH3); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 173.8(C-1′),130.3(C-8),129.6(C-9),103.5(C-1″),76.9(C-5″),76.5(C-3″),74.0(C-3),73.5(C-2″),71.0(C-2′),70.5(C-4),70.0(C-4″),69.1(C-1),61.1(C-6″),49.9(C-2),34.4,32.4,32.1,31.6,31.4,29.2,29.1,29.0,28.8,28.7,25.6,24.5,22.2(均为CH2),13.9(Me)。以上数据与文献(黄朝辉等,2005)基本一致,故鉴定该化合物为1-O-β-D-葡萄糖-(2S,3S,4R,8E)-2-[( 2′R)-2′-羟基棕榈酰胺]-8-十八烯-1,3,4-三醇。

  • 化合物 12:黄色粉末。ESI-MS m/z: 479 [M+H]+,分子式C22H22O121H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.61(1H,brs,5-OH),8.03(1H,d,J=2.4 Hz,H-2′),7.50(1H,dd,J=8.4,2.4 Hz,H-6′),6.91(1H,d,J=8.4 Hz,H-5′),6.43(1H,brs,H-8),6.20(1H,brs,H-6),5.52(1H,d,J=7.8 Hz,H-1″),3.85(3H,s,3′-OCH3),3.36~3.69(6H,糖上的质子); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 177.4(C-4),164.7(C-7),161.3(C-5),156.5(C-9),156.2(C-2),149.5(C-3′),147.1(C-4′),133.2(C-3),121.9(C-6′),121.1(C-1′),115.2(C-2′),113.6(C-5′),103.9(C-10),101.7(C-1″),98.9(C-6),93.8(C-8),76.0(C-5″),73.2(C-3″),71.3(C-2″),68.0(C-4″),60.4(C-6″),56.0(3′-OCH3)。以上数据与文献(张涛等,2021)基本一致,故鉴定该化合物为异鼠李素-3-O-β-D-半乳糖苷。

  • 化合物 13:黄色粉末。ESI-MS m/z: 465 [M+H]+,分子式C21H20O121H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.63(1H,s,5-OH),7.58(1H,dd,J=9.0,2.4 Hz,H-6′),7.58(1H,d,J=2.4 Hz,H-2′),6.84(1H,d,J=9.0 Hz,H-5′),6.38(1H,d,J=1.8 Hz,H-8),6.18(1H,d,J=1.8 Hz,H-6),5.46(1H,d,J=7.2 Hz,H-1″),3.07~3.59(6H,糖上的质子); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 177.4(C-4),164.8(C-7),161.3(C-5),156.4(C-2),156.1(C-9),148.6(C-4′),144.9(C-3′),133.3(C-3),121.6(C-6′),121.2(C-1′),116.2(C-5′),115.3(C-2′),103.8(C-10),101.0(C-1″),98.9(C-6),93.6(C-8),77.6(C-5″),76.6(C-3″),74.2(C-2″),70.0(C-4″),61.0(C-6″)。以上数据与文献(余邦伟等,2021)基本一致,故鉴定该化合物为异槲皮苷。

  • 化合物 14:黄色粉末。ESI-MS m/z: 421 [M-H]-,分子式C19H18O111H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.22(1H,d,J=9.2 Hz,H-6),7.12(1H,d,J=9.2 Hz,H-7),6.32(1H,d,J=2.0 Hz,H-4),6.12(1H,d,J=2.0 Hz,H-2),4.75(1H,d,J=7.6 Hz,H-1′),3.17~3.76(糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 180.2(C-9),167.0(C-3),162.9(C-1),156.5(C-4a),149.3(C-8),144.8(C-4b),141.0(C-5),120.6(C-6),112.7(C-7),111.9(C-8a),103.6(C-1′),102.1(C-8b),98.5(C-2),93.8(C-4),77.4(C-5′),75.9(C-3′),73.5(C-2′),69.8(C-4′),60.9(C-6′)。以上数据与文献(Sakamoto et al.,1982)基本一致,故鉴定该化合物为去甲当药醇苷。

  • 化合物 15:黄色粉末。ESI-MS m/z: 419 [M+H]+,分子式C20H18O101H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.40(2H,overlap,H-2′,6′),6.89(1H,d,J=8.0 Hz,H-5′),6.64(1H,s,H-8),6.49(1H,s,H-3),4.55(1H,d,J=9.6 Hz,H-1″),3.39~4.17(5H,糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 181.7(C-4),163.7(C-2),163.1(C-7),159.9(C-5),156.2(C-9),149.8(C-4′),145.7(C-3′),121.3(C-1′),118.9(C-6′),115.9(C-5′),113.2(C-2′),108.9(C-6),103.3(C-10),102.7(C-3),93.9(C-8),74.5(C-3″),74.0(C-1″),70.2(C-5″),68.9(C-4″),68.5(C-2″)。以上数据与文献(Wang et al.,2011;Liaw et al.,2022)基本一致,故鉴定该化合物为木犀草素-6-C-α-L-阿拉伯糖苷。

  • 化合物 16:黄色粉末。ESI-MS m/z: 449 [M+H]+,分子式C21H20O111H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 8.06(2H,m,H-2′,6′),6.86(2H,m,H-3′,5′),6.41(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.0 Hz,H-6),5.37(1H,d,J=7.6 Hz,H-1″),3.29~3.68(糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 177.4(C-4),164.6(C-7),161.1(C-5),159.9(C-4′),156.4(C-2),156.2(C-9),133.2(C-3),130.8(C-2′,6′),120.8(C-1′),115.0(C-3′,5′),103.7(C-10),101.8(C-1″),98.7(C-6),93.6(C-8),75.7(C-5″),73.1(C-3″),71.2(C-2″),67.8(C-4″),60.1(C-6″)。以上数据与文献(石舒雅等,2019)基本一致,故鉴定该化合物为山奈酚-3-O-β-D-半乳糖苷。

  • 化合物 17:黄色粉末。ESI-MS m/z: 449 [M+H]+,分子式C21H20O111H-NMR(600 MHz,DMSO-d6δ: 12.50(1H,s,5-OH),10.16(1H,s,3-OH),9.56(1H,s,4′-OH),8.08(2H,d,J=9.0 Hz,H-2′,6′),6.94(2H,d,J=9.0 Hz,H-3′,5′),6.80(1H,d,J=2.4 Hz,H-8),6.42(1H,d,J=2.4 Hz,H-6),5.07(1H,d,J=7.2 Hz,H-1″),3.16~3.72(6H,糖上的质子); 13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6δ: 176.1(C-4),162.7(C-7),160.4(C-5),159.4(C-4′),155.8(C-9),147.5(C-2),136.0(C-3),129.7(C-2′,6′),121.5(C-1′),115.5(C-3′,5′),104.7(C-10),99.9(C-1″),98.8(C-6),94.4(C-8),77.2(C-3″),76.4(C-5″),73.1(C-2″),69.5(C-4″),60.6(C-6″)。以上数据与文献(李彦等,2018)基本一致,故鉴定该化合物为山奈酚-7-O-β-D-葡萄糖苷。

  • 化合物 18:黄色粉末。ESI-MS m/z: 449 [M+H]+,分子式C21H20O111H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.45(1H,dd,J=8.0,2.0 Hz,H-6′),7.42(1H,d,J=2.0 Hz,H-2′),6.90(1H,d,J=8.4 Hz,H-5′),6.79(1H,d,J=2.4 Hz,H-8),6.76(1H,s,H-3),6.44(1H,d,J=2.4 Hz,H-6),5.09(1H,d,J=7.6 Hz,H-1″),3.15~3.72(6H,糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6)δ: 182.0(C-4),164.5(C-2),163.0(C-7),161.2(C-5),157.0(C-9),150.0(C-4′),145.8(C-3′),121.4(C-1′),119.2(C-6′),116.0(C-5′),113.6(C-2′),105.4(C-3),103.2(C-10),99.9(C-1″),99.6(C-6),94.7(C-8),77.2(C-4″),76.4(C-3″),73.1(C-2″),69.5(C-5″),60.6(C-6″)。以上数据与文献(肖春荣等,2019)基本一致,故鉴定该化合物为木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷。

  • 化合物 19:黄色粉末。ESI-MS m/z: 433 [M+H]+,分子式C21H20O101H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.93(2H,d,J=8.8 Hz,H-2′,6′),6.92(2H,d,J=8.8 Hz,H-3′,5′),6.79(1H,s,H-3),6.51(1H,s,H-8),4.59(1H,d,J=10.0 Hz,H-1″),3.09~4.08(6H,糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 182.0(C-4),163.6(C-2),163.5(C-7),161.3(C-9),160.8(C-4′),156.3(C-5),128.6(C-2′,6′),121.2(C-1′),116.1(C-3′,5′),109.0(C-6),103.4(C-10),102.8(C-3),93.7(C-8),81.7(C-5″),79.0(C-1″),73.1(C-2″),70.7(C-3″),70.2(C-4″),61.6(C-6″)。以上数据与文献(任英杰等,2021)基本一致,故鉴定该化合物为异牡荆苷。

  • 化合物 20:黄色粉末。ESI-MS m/z: 611 [M+H]+,分子式C27H30O161H-NMR(400 MHz,DMSO-d6δ: 7.54(1H,dd,J=8.0,2.4 Hz,H-6′),7.53(1H,d,J=2.4 Hz,H-2′),6.85(1H,d,J=8.8 Hz,H-5′),6.39(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.0 Hz,H-6),5.33(1H,d,J=7.6 Hz,H-1″),4.38(1H,d,J=1.6 Hz,H-1’’’),0.98(3H,d,J=6.4 Hz,H-6’’’),3.05~3.71(糖上的质子); 13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6δ: 177.2(C-4),164.5(C-7),161.1(C-5),156.4(C-2,9),148.4(C-4′),144.7(C-3′),133.3(C-3),121.5(C-6′),121.0(C-1′),116.2(C-5′),115.2(C-2′),103.7(C-10),101.2(C-1″),100.6(C-1’’’),98.7(C-6),93.5(C-8),76.5(C-3″),75.8(C-5″),74.0(C-2″),71.9(C-4’’’),70.6(C-3’’’),70.2(C-4″),70.0(C-2’’’),68.1(C-5’’’),66.9(C-6″),17.5(C-6’’’)。以上数据与文献(Zhu et al.,2020)基本一致,故鉴定该化合物为芦丁。

  • 4 抗炎活性筛选结果

  • 利用CCK-8法测定RAW264.7细胞在不同化合物浓度环境下的存活率来评价对应化合物的细胞毒性作用。根据细胞毒性测试结果对本实验化合物的给药浓度进行设计,结果显示,化合物23141620在浓度为100 μmol·L-1时,化合物1568911-1319在浓度为50 μmol·L-1,化合物471018在浓度为25 μmol·L-1时细胞存活率均在90%以上,表明在此给药浓度范围内无细胞毒性。

  • 采用LPS造模24 h后,与空白组相比,模型组细胞的NO分泌量显著增加(P<0.01),表明造模成功。由表1可知,与模型组相比,除6个化合物(化合物11113141620)对细胞的NO分泌量无显著影响外,化合物471018在浓度为25 μmol·L-1时,化合物56891219在浓度为50 μmol·L-1时,化合物23在浓度为100 μmol·L-1时均可显著降低细胞的NO分泌量(P<0.05,P<0.01)。

  • 5 讨论与结论

  • 本研究从杏叶防风全草70%乙醇提取物中分离鉴定了20个化合物,包括15个黄酮类化合物(5-1012-20),2个酚类化合物(14),1个木脂素类化合物(2),1个苯丙烷类化合物(3)和1个酰胺类化合物(11)。其中,化合物2581112141517均为首次从茴芹属植物中分离得到,化合物134671013161820均为首次从杏叶防风中分离得到。

  • 炎症是机体稳态受到干扰时常见的病理状态,许多疾病的发生会伴随着炎症的产生,即“十病九炎”。炎症的发生是由多种炎症介质、细胞因子及信号通路共同参与调节来完成的,NO作为一种同时拥有促炎和抗炎双重作用的生物活性物质(曹谨玲等,2021;李潭等,2021),在炎症级联反应中,特别是在炎症反应的发生和信号传导方面起到关键的调节作用(羊波等,2016)。因此,本研究利用LPS诱导RAW264.7细胞产生NO为评价模型,从实验结果来看,木脂素类化合物(2)、苯丙烷类化合物(3)、黄酮类化合物(5-10121819)及酚类化合物(4)在安全浓度范围内对LPS诱导RAW264.7细胞产生的NO具有显著抑制作用,其抑制率分别为78.36%、76.51%、80.82%、64.88%、83.60%、61.21%、79.80%、68.16%、62.14%、81.14%、71.26%、57.37%。其中,化合物5在50 μmol·L-1浓度下,化合物718在25 μmol·L-1浓度下的NO抑制率与阳性对照药地塞米松在25 μmol·L-1浓度下的NO抑制率相当。

  • 图1 化合物1-20的结构式

  • Fig.1 Chemical structures of compounds 1-20

  • 目前,茴芹属民间药用植物的药理活性研究多为粗提物,单体化合物的药理活性尤其是抗炎活性方面的研究较少,仅见短果茴芹甲醇提取物中分离得到的奎宁酸衍生物对LPS诱导BV-2细胞的抗炎活性(Lee et al.,2013)。本研究对杏叶防风进行了化学成分和抗炎活性研究,在一定程度上丰富了杏叶防风的化学成分,初步探明了黄酮类化合物是其发挥抗炎作用的活性成分,为进一步研究和开发其药理活性奠定了基础,同时也为进一步扩大茴芹属药用植物的化学成分及活性研究提供了重要的参考依据。

  • 表1 杏叶防风化合物对LPS诱导 RAW 264.7 细胞产生NO的抑制率(n=3)

  • Table1 Inhibition ratios of constituents on production of NO in LPS-induced RAW264.7 cells (n=3)

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