Page 7 - 《广西植物》2023年第7期
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7 期                   向维等: 三七皂苷类自毒物质降解细菌分离及其降解特性                                          1 1 7 5

                                                                    ̄1
            果(李 茹 和 陈 鹏ꎬ2011ꎻ 李 敏 等ꎬ2019ꎻ Liu et al.ꎬ          gL ꎮ TSA 培养基( pH 7.0): 胰蛋白胨 15 g
            2019)ꎮ 目前ꎬ研究人员已经筛选到了一些能降解                          L 、大豆蛋白胨 5 gL 、氯化钠 5 gL ꎮ
                                                                                                    ̄1
                                                                 ̄1
                                                                                     ̄1
            自毒物质的细菌ꎬ主要是针对酚酸类物质ꎬ这些微                             1.3 降解菌的富集和驯化
            生物主 要 来 源 于 土 壤 等 外 界 环 境ꎬ 如 假 单 胞 菌                   将土壤样品中的杂物清理干净ꎬ取不同采样
            (Pseudomonas )、 根 瘤 菌 ( Rhizobia )、 芽 孢 杆 菌        点的土 壤 样 品 5 gꎬ分 别 添 加 到 100 mL 含 有 50
                                                                       ̄1
            ( Bacillus )、 链 霉 菌 ( Streptomyces ) 等 ( 李 敏 等ꎬ    mgmL 总皂苷的 MSM 液体培养基中ꎬ置于 30
            2019)ꎮ 但是ꎬ目前对于总皂苷类物质降解菌株的                          ℃ 、180 rmin 的恒温培养振荡器中培养 7 dꎮ 此
                                                                             ̄1
            报道却较少ꎮ 因此ꎬ筛选并利用降解菌使土壤中                             后ꎬ每 7 d 取 上 一 次 培 养 液 10 mL 转 接 到 新 的
            皂苷类自毒物质快速消减ꎬ对后续开展连作土壤                              MSM 培养液中ꎬ并提高总皂苷的底物浓度至 100
                                                                       ̄1
            生物修复的研究具有重要意义ꎮ                                     mgmL ꎬ于相同条件下培养ꎮ 重复此操作ꎬ并提
                 本研究以皂苷类自毒物质为筛选靶标ꎬ采用富                          高底物浓度(2 倍法) 直至总皂苷最高浓度达到
            集和驯化策略从三七根际土壤中分离降解细菌ꎬ同                             400 mgmL 为止ꎮ 每个处理均设 3 次重复ꎬ以加
                                                                           ̄1
            时结合 16S rRNA 基因测序分析对活性菌株进行分                        入无菌水为空白对照(刁硕等ꎬ2017)ꎮ
            类鉴定ꎬ并综合利用化学法、色谱法评价分离菌株                             1.4 降解菌的分离及纯化
            的降解能力ꎮ 拟探讨:(1) 从连作三七根际土壤筛                              取最后一次富集菌液ꎬ将菌液 10 倍比稀释ꎬ
            选皂苷类自毒物质降解细菌的可行性ꎻ(2) 菌株对                           吸取一定量的稀释液分别涂布至 LB 固体培养基
            三醇型和二醇型皂苷降解能力的差异ꎻ(3) 液体培                           上ꎬ以无菌水为对照ꎬ置于 30 ℃ 的恒温培养箱中
            养条件下ꎬ不同因素对降解菌降解能力的影响ꎮ                              培养ꎬ观察并记录菌落形状、大小、透明度及颜色
                                                               等ꎮ 将同一平板上不同形态的菌落分别接种至含
            1  材料与方法                                           400 mgmL 三七总皂苷的 MSM 固体培养基上划
                                                                           ̄1
                                                               线培养ꎬ直至长出单菌落ꎮ 继续挑选单菌落划线
            1.1 供试土壤                                           培养ꎬ重复此步骤ꎬ至平板上所有菌落的外部形态
                 在广西百色市那坡县三七人工种植基地( Aꎬ                         一致ꎮ 将分离纯化后的菌株分别用甘油超低温和
            105°55′56″ E、23°34′11″ N)、广西百色市田林县三                真空冻干 2 种保存方法保存ꎬ备用ꎮ
            七人工种植基地(Bꎬ106°3′1″ E、24°11′28″ N)、那                1.5 降解能力初筛
            坡县某农 户 家 半 野 生 三 七 地 ( Cꎬ105° 54′29″ E、                将纯化后的菌种接种于 LB 培养基中培养 24
            23°21′51″ N)、云南文山市三七人工种植基地( Dꎬ                     hꎬ用无菌水重悬菌液ꎻ取 5 mL 菌液接种到含有
            103°50′33″ E、23°57′38″ N) 采集样品ꎮ 从每个采               200 mgmL 总皂苷的 100 mL MSM 液体培养基
                                                                           ̄1
            样地随机选取 5 个点ꎬ选择 3 年生及以上的健康三                         中ꎬ在 30 ℃ 、180 rmin 条件下培养ꎬ所有处理重
                                                                                      ̄1
            七ꎬ用铁铲小心地将植株连根挖出ꎬ抖落根周围土                             复 3 次ꎬ以接种无菌水为对照ꎮ 96 h 后ꎬ对培养物

            壤ꎬ用刷子轻刷根系收集根际土壤ꎮ                                   离心且收集上清液ꎬ用氯仿萃取上清液ꎬ保留氯仿
            1.2 仪器和试剂                                          层、挥干ꎬ用乙醇定量溶解后基于香草醛法测定培
                 Ezup 柱式细菌基因组 DNA 抽提试剂盒购自                      养液中总皂苷含量( 丁永丽等ꎬ2013)ꎮ 精密配制

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            生工生物工程( 上海) 股份有限公司ꎬBiolog GenIII                   分别含 50、100、150、200、250 mgmL 浓度的总
            鉴定微孔板购自美国 BIOLOG 公司ꎮ 紫外分光光                         皂苷供试溶液ꎬ以 MSM 培养基为校正空白ꎬ测量
            度计(UV1800ꎬ日本岛津公司)、菌种鉴定仪( GEN                       总皂苷含量ꎮ 以总皂苷浓度为横坐标ꎬ吸光值为
            IIIꎬ美国 BIOLOG 公司)、PCR 仪( impliAmpꎬ赛默               纵坐标绘制标准曲线ꎬ计算校正方程和 R 值ꎮ
                                                                                                    2
            飞世尔科技有限公司)ꎮ                                        1.6 降解菌 16S rRNA 基因序列分析
                 Luria ̄Bertani 培养基( LBꎬpH 7.0): 含胰蛋白               使用基因组 DNA 抽提试剂盒提取细菌基因
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            胨 10.0 gL 、酵母提取物 5.0 gL 和 NaCl 10.0            组ꎬ使 用 通 用 引 物 27F 和 1492R 从 基 因 组 扩 增
            gL ꎮ 无 机 盐 离 子 培 养 基 ( MSMꎬpH 7. 0): 含           16S rRNA基因( Xiang et al.ꎬ 2020)ꎮ PCR 产物委
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            (NH ) SO 1.0 gL 、KH PO 0.5 gL 、K HPO           托给上海生工进行测序ꎮ 所得的 16S rRNA 基因序
                 4  2  4            2   4            2    4
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            1.5 gL 、NaCl 1.0 gL 和 MgSO 7H O 0.1          列提交给 EzBioCloud 在线鉴定ꎬ并将序列上传至
                                              4     2
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