Page 95 - 《广西植物》2025年第12期
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12 期                 田岳等: 工业大麻 WOX 基因家族的全基因组鉴定及表达分析                                       2 2 3 7

            器官中特异性表达、WOX5 则在根中表达量较高                            性置换(天冬氨酸替换为酪氨酸)ꎻ而 WOX4 第 37
            (李晓旭等ꎬ 2021)ꎬ油桐 WOX13 在根和茎中的表                      位甘氨酸则高度保守ꎬ未检测到 37 位甘氨酸位点
            达较高(王占军等ꎬ 2024)ꎬ柑橘 WUS 基因在茎中                       突变ꎮ 这些结构特征提示ꎬWOX13 的 49 位点可能

            表达较高ꎬWOX9 则主要在花中表达( Shafique et                    参与物种特异性调控元件的识别ꎬ而 WOX4 的 37
            al.ꎬ 2021)ꎬ马铃薯 WOX1 在花中表达量较高ꎮ 与                    位点则在所有分析物种中严格保守ꎬ提示其可能
            上述结果类似ꎬ本文 CsWOX 基因表达同样表现出                          在维持 DNA 结合基序三维构象中具有不可替代
            组织表达特异性ꎮ 通过启动子区域的顺式元件的                             性ꎬ在维持家族蛋白 DNA 结合功能 中 发 挥 核 心
            预测分析表明ꎬCsWOX 基因家族成员的启动子含                           作用ꎮ
            有丰富的顺式作用元件ꎬ这些元件不仅涉及光响                                  Kępczyńska 和 Karczyn ' ski(2020) 研究发现ꎬ植
            应ꎬ还参与植物激素信号传导、环境胁迫应答及植                             物促进微生物通过合成生长素类似物ꎬ调控细胞
            物的生长发育调控ꎮ 例如ꎬABRE 是 ABA 信号通                        周期及 WOX5 基因的表达ꎬ从而促进根系发育ꎬ优
            路的关键元件ꎬ当植物遭遇干旱、高盐、低温等非                             化根系构型ꎮ 这一机制为微生物肥料的开发及植
            生物胁迫时ꎬ内源 ABA 水平升高ꎬABRE 通过招募                        物-微生物互作研究提供了重要的理论依据ꎮ 钩
            转录因 子 激 活 胁 迫 相 关 基 因ꎬ 提 高 植 物 抗 逆 性               状木霉可能通过双重机制调控 WOX 基因:一方面
            (Hossain et al.ꎬ 2010)ꎻO2 ̄site 通过结合转录因子            通过分泌吲哚乙酸( IAA) 等植物激素( Bae et al.ꎬ
            O2(Opaque ̄2) 驱动胚乳中贮藏蛋白的合成ꎬ直接                       2009)ꎬ直接激活 WOX 家族基因表达ꎬ促进根系构
            影响种 子 营 养 品 质 和 农 艺 性 状 ( Schmidt et al.ꎬ          型优化和纤维发育ꎻ另一方面ꎬ其分泌的超氧化物
            1992)ꎮ 所有 CsWOX 基因的启动子区域中ꎬ参与                       歧化酶(SOD)、多酚氧化酶( PPO) 等抗氧化物质
            光响应的顺式元件数量最多ꎬ与杨旭(2023) 研究                          (Abdelkhalek et al.ꎬ 2022)ꎬ可有效清除过氧化氢
            结果相似ꎬ其中 G ̄box 元件数量最多ꎬG ̄box 为光                      (H O )等活性氧组分ꎬ缓解干旱引发的氧化损伤ꎮ
                                                                  2  2
            响应调控的核心元件之一ꎬ光敏色素( phyB) 通过                         这一协同作用机制能够解释本研究在单一干旱胁
            感知光照以激活转录因子 PIF7 直接结合 G ̄box 元                      迫下ꎬ工业大麻通过下调 WOX4 表达收缩水分运
            件ꎬ来调控植株光形态建成( Li et al.ꎬ 2012)ꎮ 综                  输系统以降低蒸腾损耗ꎻ而当干旱和钩状木霉共
            上认为ꎬCsWOX 基因可能参与工业大麻的组织生                           处理时ꎬ微生物介导的氧化压力缓解机制延迟了
            长、逆境响应以及器官发育调控过程ꎬ但其具体分                             植物的胁迫响应进程ꎬ 使 WOX4 表达量维持在接
            子调控机制有待进一步研究ꎮ                                      近对照组的水平ꎮ 此外ꎬWOX13 在植物生长发育
                 系统进化树结果表明ꎬ基因家族各成员之间                           和逆境响应中发挥潜在作用ꎬ具有一定的抗逆育
            基因结构差异体现出亲缘关系ꎬ本研究预测工业                              种潜力ꎮ Minh ̄Thu 等(2018) 研究表明ꎬ水稻中的
            大麻 WOX 蛋白包含 10 个保守的结构基序ꎬ进化                         OsWOX13 参与非生物胁迫耐受性和早期开花ꎮ 在
            树各支系的基序在数量上存在差异ꎬ但几乎均具                              干旱胁迫下 WOX13 被诱导表达(张玉等ꎬ 2024)ꎮ
            有特异性的基序特征ꎮ 此外ꎬWOX 转录因子均含                           CsWOX13a / CsWOX13b 在所有组织中均有较高的
            有由 2 个核心基序(Motif 1 和 Motif 2)构成的同源                 表达量且 CsWOX13a / CsWOX13b 在干旱处理和钩
            盒结构的保守结构域ꎬ该保守结构是识别并结合                              状木霉处理条件下的基因表达量均有显著变化ꎬ

            下游 DNA 的关键结构域ꎬ特别是在第三螺旋( α3)                        对应的同源基因 AtWOX13 参与干细胞形成、激活
            中的 R / K 残基为关键氨基酸位点ꎬ这些残基通过                         细胞生长等生物学过程( 王爽ꎬ 2019)ꎬ参与调节
            氢键或静电作用直接与 DNA 双螺旋的碱基或磷                            植株维管形成层活性和木材形成(Haghighat et al.ꎬ
            酸骨架结 合 ( Sloan et al.ꎬ 2020)ꎬ若 这 些 残 基 突           2024)ꎬ调节植株抗旱性( Lv et al.ꎬ 2023)ꎬ推测工
            变ꎬ可能破坏与 DNA 的相互作用ꎬ导致结合能力                           业大麻 CsWOX13a / CsWOX13b 基因可能具有相似
            下降甚至丧失ꎮ 跨物种比较分析揭示 WOX 转录                           功能ꎮ 综上表明ꎬ工业大麻 CsWOX 基因家族在组
            因子关键功能位点的进化保守性:在拟南芥、工业                             织表达特异性和非生物胁迫响应能力方面表现出
            大麻及马铃薯( 叶明辉等ꎬ 2021)ꎬ白桦( 程大伟                        相似的模式ꎬ暗示相应基因可能参与工业大麻生
            等ꎬ 2025 )ꎬ 枳 ( 马 青 龄 等ꎬ 2022 ) 等 植 物 中ꎬ            长发育过程和非生物胁迫响应ꎮ
            WOX13 同源异型结构域第 49 位氨基酸发生特异                             综上 认 为ꎬ 本 研 究 系 统 分 析 了 工 业 大 麻
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