Page 64 - 《广西植物》2024年第10期
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1 8 6 6                                广  西  植  物                                         44 卷
            (Berendsen et al.ꎬ 2012ꎻ 孙雪婷等ꎬ2015ꎻTerhonen        壤类型为砖红壤ꎬ在种植木薯前为多年撂荒地ꎬ土
            et al.ꎬ 2019ꎻ de Medeiros et al.ꎬ 2019)ꎮ 大量研究      壤肥力中等ꎬ0 ~ 20 cm 土层 pH 值、有机质含量、碱
            表明ꎬ作物连作后ꎬ土壤微生物由细菌型向真菌型                             解氮 含 量、 有 效 磷、 速 效 钾 含 量 详 见 覃 锋 燕 等
            转化ꎬ这也是由连作引起的土壤地力衰竭的标志                              (2022)ꎮ
            之一ꎮ 例如:马铃薯连作造成单一的根系分泌物                             1.2 试验材料
            富集ꎬ导致根际土壤微生物丰富度下降ꎬ真菌所占                                 供试材料为广西主栽的工业用高产木薯品种
            比例增加ꎬ细菌减少( 马玲ꎬ2015)ꎻ连作烟地的土                         ‘华南 205’ꎬ种茎由广西农业科学院提供ꎮ
            壤细菌数量逐年减少ꎬ真菌数量逐年增加( 王茂胜                            1.3 试验方法
            等ꎬ2008)ꎻ在种植番茄的土壤中ꎬ细菌数量也与连                          1.3.1 试验设计  按常规方式整地ꎬ地块划分成 12
            作年限呈负相关ꎬ真菌数量变化趋势与之相反( 孙                            个 70 m 的试验小区ꎬ以 1 m × 1 m 的株行距每个
                                                                      2
            艳艳等ꎬ2010)ꎮ 长期连作的大豆土壤真菌丰度显                          小区种植 70 株木薯ꎮ 2019 年随机选择 3 个小区
            著上升ꎬ连作玉米土壤真菌丰度显著下降ꎬ而连作                             作为试验重复ꎬ此后定位该小区作为年际重复ꎮ
            小麦土壤真菌丰度变化不显著ꎬ说明不同作物连                              分别于 2019 年 4 月 16 日( 连作 0 茬)、2020 年 4
            作对土壤微生物群落影响的变化趋势不同ꎬ可能                              月 10 日(连作 1 茬) 及 2021 年 4 月 11 日( 连作 2
            是由不同作物的根系分泌物、残留根系及脱落物                              茬)种植木薯ꎬ试验期间木薯田间管理方式一致ꎮ
            的成分和数量差异所引起( 刘杭ꎬ2019)ꎮ 然而ꎬ木                        试验期间无人工灌水ꎬ降雨量及月均温度详见彭
            薯连作对土壤微生物群落演替的影响机制尚未                               晓辉等(2024)ꎮ
            明确ꎮ                                                1.3.2 土壤样品采集与处理  于木薯种植后 250 d
                 近年来ꎬ关于木薯连作障碍的研究主要集中                           采集土壤样品ꎮ 每个小区随机挑选 3 株长势均匀
            于木薯连作对土壤理化性质及土壤微生物的影响                              的木薯植株ꎬ挖出完整块根ꎬ除去大块泥土ꎬ采用
            (周贵靖ꎬ2017ꎻ刘珊廷ꎬ2020)ꎮ 木薯连作障碍与                       “抖根法”收集根际土壤ꎻ以“S” 形在各小区选取 5
            土壤理化性状恶化、速效氮磷钾含量下降、土壤微                             个采样点ꎬ采集 0 ~ 20 cm 土层土样ꎬ混匀作为该小
            生物组成变化、木薯根系分泌有机酸积累有密切                              区非根际土壤ꎮ 挑除碎石、植物落叶及根系等杂
            关系ꎮ 周贵靖(2017) 的研究表明ꎬ木薯连作会导                         物后ꎬ将样品混匀后分为 3 份:第一份用液氮速冻
            致根际土壤三相比变劣ꎬ并抑制土壤过氧化氢酶                              于-80 ℃ 保存ꎬ用于测定微生物群落多样性ꎻ第二
            活性ꎬ增加酚酸含量ꎬ降低 pHꎻ刘珊廷(2020) 的研                       份于冰盒内保鲜ꎬ带回实验室 4 ℃ 保存ꎬ用于土壤
            究表明ꎬ连作木薯地的土壤真菌种群数量增加ꎬ但                             酶活性的测定ꎻ第三份风干后碾碎过筛ꎬ用于土壤
            是群落丰度及多样性下降ꎬ土壤碱解氮含量和速                              理化性质的测定ꎮ
            效钾含量均降低ꎮ 植物根系分泌物对根际微生物                             1.3.3 土壤理化性质及酶活性测定  土壤 pH、碱解
            生态系统的直接调控必然引起根际与非根际土壤                              氮含量、有机质含量、有效磷含量、速效钾含量及
            微生物群落变化差异ꎬ因此有必要系统研究木薯                              脲酶活性的测定方法详见覃锋燕等(2022)ꎮ
            连作对根际土壤与非根际土壤真菌群落演替的影                              1.3.4 土壤微生物高通量测序及生物信息学分析
            响ꎮ 本研究在定点连作木薯的基础上ꎬ利用生物                               按照 E.Z.N.A. Soil DNA Kit(Omega Bio ̄Tek)的
                                                                              ®
            信息学手段与高通量测序技术ꎬ分析连作对木薯                              操作步骤提取土壤 DNAꎬ利用 NanoDrop2000 检测
            根际和非根际土壤真菌群落演替的影响ꎬ为系统                              所获得的 DNA 浓度和纯度ꎬ使用 1%琼脂糖凝胶

            解析木薯连作障碍形成机制提供理论依据ꎮ                                电泳检测 DNA 质量ꎮ 通过特异引物 SSU0817F(5′ ̄
                                                               TTAGCATGGAATAATRRAATAGGA ̄3′) 和 1196R ( 5′ ̄
            1  材料与方法                                           TCTGGACCTGGTGAGTTTCC ̄3′) 对 18S rRNA 序 列 的
                                                               V4 区进 行 PCR 扩 增ꎬ利 用 2% 琼 脂 糖 凝 胶 回 收
            1.1 试验地概况                                          PCR 产 物ꎬ 按 照 AxyPrep DNA Gel Extraction Kit
                 试验于 2019—2021 年在位于广西壮族自治区                     (Axygen BiosciencesꎬUnion CityꎬCAꎬUSA) 使用说
            南宁市武鸣区的广西农业科学院武鸣里建试验基                              明进行回收和纯化ꎬ并用 2% 琼脂糖凝胶电泳检
            地(107°49′26″ E、22°59′58″ N) 进行ꎮ 试验地土               测ꎬ利 用 Quantus  TM  Fluorometer( Promegaꎬ USA) 进
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