Page 193 - 《广西植物》2025年第11期
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11 期             郭堂丽等: 福建万木林大叶梅属地衣内生真菌群落多样性及功能预测                                          2 1 3 7

            梅ꎬ3 份ꎻ大叶梅ꎬ13 份) (表 1)ꎮ 样品放入采集袋ꎬ                    likelihoodꎬML ) 进 行 系 统 发 育 树 构 建ꎮ 采 用
            带回实验室冷冻保存ꎮ 地衣标本保存于聊城大学                             RAxML ̄HPCv. 8 进 行 最 大 似 然 自 举 分 析
            农业与生物学院菌物标本馆(LCUF)ꎮ                                (Stamatakisꎬ 2014)ꎬ使用默认参数ꎬNSFXSEDE 资
            1.2 地衣内生真菌的分离纯化                                    源ꎬ对每个节点以假设1 000个复制值来评价自展

                 地衣样品采用组织分离法( 郭堂丽等ꎬ2024)                       值ꎮ 生成的系 统 发 育 树 在 Figtree v1. 4. 2 下 可 视
            进行处理后接种到 PDA 培养基ꎮ 将平板在 25 ℃                        化ꎮ ML 自举(bootstrapꎬBS) 值大于等于 70%的被
            恒温培养箱中培养 5 ~ 7 dꎬ每日观察ꎬ待菌丝从地                        认为显著支持ꎮ
            衣体组织块周围长出后ꎬ从边缘挑取菌丝移至新                              1.4 地衣体 DNA 提取与高通量测序
            的 PDA 平板上进行纯化ꎮ 进行多次纯化ꎬ直至得                              同上述组织分离法对地 衣 体 表 面 灭 菌 处 理
            到单一菌落ꎻ将纯化好的菌株接种于 PDA 斜面培                           后ꎬ对 16 份地衣体进行微生物多样性分析ꎬ样品

            养基ꎬ保存于 4 ℃ 冰箱ꎮ                                     信息编号见表 1ꎮ 采用 TGuide S96 磁珠法土壤 / 粪
            1.3 培养菌株的形态特征观察及分子鉴定                               便基因组 DNA 提取试剂盒提取地衣体基因组总
                 (1)地衣内生真菌的形态观察:将纯化得到的                         DNAꎬ具体方法参照 TGuide S96 磁珠法土壤 / 粪便
            地衣内生真菌菌株接种到 PDA 培养基中ꎬ25 ℃ 培                        基因组 DNA 提取试剂盒说明书ꎮ 扩增真菌 ITS1
            养 5 ~ 7 d 后观察菌落正反面特征并拍照记录ꎮ 挑                       基 因 的 引 物 是 ITS1 ( 同 上 ) 和 ITS2 ( 5′ -
            取菌丝ꎬ制备水装片于显微镜下观察并记录菌丝                              GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3′) ( de Beeck et al.ꎬ
            形态ꎬ包括菌丝的粗细、颜色及孢子的形态特征                              2014)ꎬ扩增后的 PCR 产物用 1.8%的琼脂糖凝胶
            (周璇等ꎬ2021)ꎮ (2) DNA 提取、ITS 序列的扩增                   电泳检测ꎮ 检测合格的 PCR 产物委托北京擎科生
            与测序:采用高效植物基因组 DNA 提 取 试 剂 盒                        物科技股份有限公司测序在 Illumina NovaSeq 测序
            (北京擎科生物科技股份有限公司) 进行地衣内生                            平台上进行高通量测序ꎮ
            真菌基因组的提取ꎮ 以内生真菌的总 DNA 为模                           1.5 高通量测序数据处理
            板ꎬ 使用真菌通用引物 ITS1(5′-CTTGGTCATTTA                       采 用 Trimmomatic v. 0. 33 ( Bolger et al.ꎬ
            GAGGAAGTAA-3′)和 ITS4 (5′-TCCTCCGCTTAT              2014)和 Cutadapt v. 1.8.3 ( Martinꎬ2011) 对原始
            TGATATGC - 3′) 进 行 PCR 扩 增 ( White et al.ꎬ         PE Reads 进行质量过滤与引物切除ꎬ随后根据目
            1990ꎻGardes & Brunsꎬ 1993)ꎮ PCR 反应体 系 为            标分辨率选择 DADA2 ( 单核苷酸精 度 去 噪 生 成
            ddH O 19 μL、2 × Taq PCR MasterMix [ 天根生化           ASVs) ( Callahan et al.ꎬ 2016) 和 USEARCH v. 10
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            科技(北京)有限公司] 25 μL、上游引物 2 μL、下                      (相似性聚类生成 OTUs) 进行序列拼接及嵌合体
            游引物 2 μL、DNA 模板 2 μLꎬ共 50 μL 体系ꎮ PCR               去 除 ( Edgar et al.ꎬ 2011ꎻ Edgarꎬ 2013 )ꎻ 基 于
            反应过程:预变性 95 ℃ 5 minꎬ94 ℃ 变性 30 sꎬ52                QIIME 2 v.2020.6 结合 UNITE 数据库完成 ASV 分
            ℃ 退火 30 sꎬ72 ℃ 延伸 1 minꎬ34 个循环ꎻ最后 72               类学注释( Bolyen et al.ꎬ 2019)ꎬ并通过宿主基因
            ℃ 延伸 10 min(郭堂丽等ꎬ2024)ꎮ 目的产物经 1%                   组比对过滤地衣大叶梅属的序列ꎬ最终利用 α / β
            琼脂糖凝胶电泳确认后由北京擎科生物科技股份                              多样性指数和 FUNGuild 功能注释解析真菌群落

            有限公司进行双向测序ꎮ (3)系统发育树的构建:                           结构与生态功能( Nguyen et al.ꎬ 2016)ꎬ结果通过
            测序结 果 在 NCBI 数 据 库 中 进 行 BLAST 同 源 比               R 语言和 QIIME 2 可视化呈现ꎮ
            对ꎬ下载相似序列ꎮ 选取毛霉门( Mucoromycota) 伞
            枝霉属( Umbelopsis Amos & H. L. Barnett) 物种作          2  结果与分析

            为外类群(Spatafora et al.ꎬ2017ꎻ娄亚坤等ꎬ2023)ꎮ
            利用 Geneious v9.0.2 软件对所测得的两条互补序                    2.1 组织培养分离的内生真菌鉴定

            列进行拼接组装ꎬ使用 MAFFT v.7 并选择“ L ̄INS ̄                       从 16 份大叶梅属地衣标本中经纯培养共得到
            i”运算 法 则 进 行 多 序 列 比 对 ( Katoh & Standleyꎬ         70 株内生真菌ꎬ地衣标本相关采集信息以及分离
            2013)ꎮ 比对后的序列矩阵在首尾处进行手动删                           得到的内生真菌数量如表 1 所示ꎮ
            减ꎮ 使 用 CIPRES 科 学 门 户 网 站 ( http: / / www.             将 ITS 测 序 结 果 通 过 NCBI 数 据 库 网 站
            phylo. org / portal2 / ) 采 用 最 大 似 然 法 ( maximum   BLAST 在线比对搜索同源序列ꎬ并进行分子系统
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