Page 62 - 《广西植物》2025年第3期
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4 4 2                                  广  西  植  物                                         45 卷
            XL et al.ꎬ 2024 )、 葛 枣 猕 猴 桃 ( A. polygama )       3.2 维生素 C (抗坏血酸)合成增强
            ( Akagi et al.ꎬ 2023ꎻ Li XL et al.ꎬ 2024)、长果猕猴         猕猴桃是维生素 C 含量最高的水果之一ꎬ其
            桃(A. longicarpa) ( Li XL et al.ꎬ 2024)、大籽猕猴        合成途径受多个转录因子调控ꎮ Liu 等( 2022)、
            桃(A. macrosperma) ( Li XL et al.ꎬ 2024)、网脉猕        Liu X 等 ( 2023) 利 用 CRISPR / Cas9 技 术 揭 示 了
            猴桃(A. reticulata) ( Li XL et al.ꎬ 2024) 和黑蕊猕       bZIP 转录因子 AcePosF21 和 MYBS1 ̄like / GBF3 复
            猴桃(A. melanandra)(Hemara et al.ꎬ 2025)等ꎮ 此         合 体 在 冷 胁 迫 下 激 活 GDP ̄L ̄半 乳 糖 磷 酸 化 酶
            外ꎬYu 等(2025)利用 8 个猕猴桃物种的 15 个高                     (GGP3) 表达的分子机制ꎮ 通过编辑这些调控因
            质量基因组组装生成了猕猴桃泛基因组ꎮ 越来越                             子ꎬ可显著提高果实中维生素 C 的积累量ꎬ为培育
            多的高质量猕猴桃全基因组测序的完成及其功能                              高营养品种提供了新策略ꎮ
            基因挖掘为 CRISPR / Cas9 基因编提供了丰富的靶                     3.3 花青素合成与果肉色泽改良

            点信息ꎮ 各品种 / 种类的相关信息详如表 1 所示ꎮ                            红心猕猴桃(如‘红阳’品种)因其独特的果肉
                 基因组资源的丰富性需与高效的遗传转化技                           色泽而备受市场青睐ꎮ Wang LH 等(2019) 研究发
            术结合才能实现编辑应用ꎮ Li PW 等(2024) 开发                      现ꎬMYB / bHLH 转录因子复合体通过激活花青素
            的农杆菌介导无标记转化系统ꎬ通过利用发根农                              合成基因(如 AcANS 和 AcF3GT1) 调控果肉红色形
            杆菌(Agrobacterium rhizogenes)的 Ri 质粒替代传统            成ꎮ 利用 CRISPR / Cas9 靶向编辑这些转录因子的
            双元载体ꎬ成功实现了猕猴桃根系的稳定编辑ꎬ并                             启动子区域ꎬ可进一步强化花青素合成ꎬ甚至实现
            且无需抗生素筛选标记ꎮ 这一技术尤其适用于编                             非红色品种的色泽改良ꎮ 此类研究为猕猴桃外观
            辑与根系发育或抗逆性相关的基因( 如 AeCBL3)ꎮ                        品质的精准设计奠定了基础ꎮ
            另外ꎬ通过优化双 sgRNA / Cas9 克 隆 策 略 和 表 达
            盒ꎬ显著提高了突变频率和多靶点编辑效率( Wang                          4  抗病性改良:从宿主到病原体的
            et al.ꎬ 2018)ꎮ 这些技术突破使得猕猴桃成为少
                                                               双向策略
            数可实现高效多靶点编辑的多年生果树之一ꎮ
                 综上所述ꎬ猕猴桃基因组资源的系统化建设
            与编辑技术的协同创新ꎬ为 CRISPR / Cas9 驱动的                     4.1 宿主抗病基因的强化
            分子设计育种奠定了“ 从序列到表型” 的全链条                                猕猴桃溃疡病由丁香假单胞杆菌猕猴桃致病
            基础ꎮ                                                变种( Pseudomonas syringae pv. actinidiaeꎬ Psa) 引
                                                               起ꎬ是威胁全球猕猴桃产业的毁灭性病害ꎮ 传统
            3  CRISPR 技术在猕猴桃果实品质                               育种中抗病基因的挖掘受限于种质资源的匮乏ꎬ
                                                               而 CRISPR / Cas9 技术为宿主抗病性的快速改良提
            改良中的应用
                                                               供了新思路ꎮ Li PW 等( 2024) 通过编辑 AeCBL3
                                                               基因ꎬ发现其调控的钙草酸晶体在细胞壁中形成
            3.1 有机酸代谢调控                                        物理屏障ꎬ可显著抑制病原菌侵染ꎮ 这一发现揭
                 果实风味是猕猴桃商品化的重要指标ꎬ其中                           示了植物次生代谢产物在抗病中的潜在作用ꎬ为
            柠檬酸 含 量 直 接 影 响 果 实 的 酸 甜 平 衡ꎮ 通 过                 通过基因编辑增强猕猴桃先天免疫提供了新靶
            CRISPR / Cas9 靶 向 敲 除 NAC 转 录 因 子 基 因              点ꎮ 此外ꎬ在红心猕猴桃中鉴定的 MYB / bHLH 复

            AcNAC1ꎬ发现突变体果实中柠檬酸含量显著降低ꎬ                          合体不仅调控花青素合成ꎬ而且还参与苯丙烷代
            同时 伴 随 乙 烯 合 成 相 关 基 因 的 上 调ꎮ Fu 等                 谢途径ꎬ可能通过增强细胞壁木质化间接提升抗
            (2023)的研究不仅揭示了 AcNAC1 在柠檬酸代谢                       病性(Chezem & Clayꎬ 2016ꎻ Wang et al.ꎬ 2022)ꎮ
            中的核心作用ꎬ而且还为通过基因编辑定向调控                              4.2 病原体毒力基因的精准干扰
            果实风味提供了范例ꎮ 此外ꎬFu 等(2021) 研究发                           除了改良宿主ꎬ直接靶向病原体基因是抗病
            现ꎬAcNAC1 通 过 调 控 甲 硫 氨 酸 磺 氧 化 物 还 原 酶             策略的另一突破ꎮ Ho(2019)首次将 CRISPR / Cas9
            (MSR)影响乙烯合成ꎬ表明 CRISPR / Cas9 技术可                   系统引 入 Psa 病 原 体ꎬ 并 成 功 构 建 了 携 带 活 性
            用于解析复杂代谢网络的级联调控机制ꎮ                                 CRISPR ̄Cas9 系统的穿梭质粒ꎮ 随后ꎬ利用该系统
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