Page 66 - 《广西植物》2025年第3期
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4 4 6                                  广  西  植  物                                         45 卷
                                                               香气 (Taratynova et al.ꎬ 2024)ꎬ提升其市场竞争
            7  技术挑战与未来展望                                       力ꎮ 同时ꎬ借鉴 Keul 等(2022)提出的“智能作物”
                                                               概念ꎬ设计可响应环境信号( 如温度、光照) 自动调
            7.1 编辑效率与脱靶效应                                      控性状的基因回路ꎬ能够让猕猴桃更好地适应环
                 尽管 Wang 等(2018)通过优化 sgRNA 设计及                 境变化ꎮ 在高温时ꎬ启动耐热基因表达ꎻ光照不足

            Cas9 表达系统ꎬ将猕猴桃的编辑效率提升超 80%ꎬ                        时ꎬ增强光合作用相关基因活性ꎬ从而提高产量和
            但在实际应用中ꎬ仍面临诸多挑战ꎮ 二倍体与多                             品质ꎬ为培育多功能、适应性强的猕猴桃新品种提
            倍体猕猴桃的等位基因复杂性ꎬ使得编辑后表型                              供新方向ꎮ
            不均一成为突出问题ꎮ 多倍体猕猴桃拥有多套染                                 虽然基因编辑技术在猕猴桃育种领域面临挑
            色体和多个等位基因ꎬ在进行基因编辑时ꎬ难以保                             战ꎬ但也充满希望ꎮ 随着技术的不断创新与升级ꎬ
            证所有等位基因都被精准修饰ꎮ 例如ꎬ在编辑与                             编辑效率与脱靶效应、非转基因编辑体系建立等
            果实甜度相关基因时ꎬ部分等位基因编辑成功可                              问题逐步被攻克ꎬ合成生物学带来了更多育种新
            能提升甜度ꎬ而未编辑或编辑效果不佳的等位基                              思路(图 3)ꎮ 猕猴桃育种将更精准、更高效ꎬ有望
            因则会导致果实甜度参差不齐ꎬ从而影响商品价                              培育出更多满足市场需求的优质品种ꎬ从而推动
            值ꎮ 此外ꎬ 脱 靶 效 应 也 不 容 忽 视ꎮ CRISPR / Cas9            猕猴桃产业的可持续发展ꎬ为全球水果市场注入
            系统可能会在非预期位点进行切割ꎬ造成非靶向                              可持续发展的潜力ꎮ
            基因的突变ꎬ引发一系列未知的生物学效应ꎬ干扰
            实验结果和育种进程ꎮ 单倍体诱导与基因编辑结                             8  结语
            合ꎬ或许是突破这些瓶颈的有效途径( Yao et al.ꎬ
            2018ꎻ Liu CL et al.ꎬ 2024ꎻ Nazir et al.ꎬ 2024)ꎮ 以      CRISPR / Cas9 技术正在系统性重构猕猴桃育
            利用 MTL 基因编辑创建单倍体为例( MTL 基因编                        种的科学范式ꎬ推动其从单一性状改良向多维度
            码花粉特异性磷脂酶)ꎬ单倍体仅含一套染色体ꎬ                             精准设计跃迁ꎮ 在基础研究层面ꎬ技术革新与基
            能简化基因编辑过程ꎬ避免等位基因干扰ꎬ使编辑                             因组 学 突 破 形 成 双 向 驱 动: 一 方 面ꎬ 多 顺 反 子
            效果更易预测和分析ꎬ有助于筛选出稳定优良性                              tRNA ̄sgRNA 体系(PTG / Cas9)通过优化 sgRNA 加
            状的植株ꎬ从而提高育种效率ꎮ                                     工效率ꎬ将靶标突变率提升近 10 倍( Wang et al.ꎬ
            7.2 非转基因编辑体系的建立                                    2018)ꎻ另一方面ꎬ多层次基因组数据库( 如 KGD)
                 目前ꎬ多数猕猴桃基因编辑研究依赖农杆菌                           和端粒 到 端 粒 参 考 基 因 组 的 构 建 ( Yue et al.ꎬ
            介导的稳定转化技术ꎬ而这一方法会导致转基因                              2020ꎬ 2023)ꎬ为跨物种调控网络解析提供了分子
            争议ꎮ 消费者对转基因产品的安全性存在疑虑ꎬ                             导航图ꎮ 值得关注的是ꎬCEN / CEN4 基因编辑系
            监管政策也较为严格ꎬ这限制了基因编辑猕猴桃                              统在二倍体至四倍体猕猴桃中实现持续开花表型
            的商业化进程ꎮ 因此ꎬ开发无标记转化系统及瞬                             ( Herath et al.ꎬ 2023)ꎬ将传统 5 年童期压缩至 2 个
            时表达 CRISPR 组分(如 RNP 递送)成为迈向商业                      月(Herath et al.ꎬ 2023)ꎬ为表型关联研究奠定了

            化应用 的 关 键 ( Chandran et al.ꎬ 2023ꎻ Li PW et        基础ꎮ 目前ꎬCEN4 基因编辑系统在二倍体和四倍
            al.ꎬ 2024)ꎮ 无标记转化系统可减少筛选标记基                        体猕 猴 桃 中 均 实 现 持 续 开 花 ( Herath et al.ꎬ

            因在编辑植株中的残留ꎬ从而降低生物安全风险ꎻ                             2023)ꎬ为加速纯合系创制提供了可能ꎻ而 FT 基因
            而 RNP 递 送 技 术 则 是 将 CRISPR / Cas9 蛋 白 和            过表达与 HA 标签融合技术初步实现开花时间调
            sgRNA 直接导入细胞ꎬ避免了外源 DNA 整合到基                        控(Herath et al.ꎬ 2023)ꎮ 这些进展为木本果树速
            因组中ꎬ有望打破转基因争议的壁垒ꎬ从而推动基                             效育种树立了新标杆ꎮ 在技术应用层面ꎬ猕猴桃

            因编辑猕猴桃走向市场ꎮ                                        基因编辑已进入产业化前夕:通过 CEN4 编辑创制
            7.3 合成生物学与多维性状整合                                   的速生种质可实现多世代性状叠加ꎬ配合监管政
                 未来猕猴桃育种有望结合 CRISPR / Cas9 与合                  策对无外源 DNA 编辑作物的分类管理ꎬ显著缩短
            成生物学工具ꎬ实现多维性状的整合调控ꎮ 例如ꎬ                            品种选育周期ꎮ 而机器学习驱动的 sgRNA 脱靶预
            将酵母的萜类合成通路引入猕猴桃ꎬ可增强果实                              测、 光控 CRISPR 开关等前瞻性技术ꎬ 为进一步提
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