Page 22 - 《广西植物》2020年第1期
P. 22

1 8                                   广  西  植  物                                         40 卷
   时ꎬ发现普遍存在假阳性现象严重而目标染色体                             2017 / 1124 / KT1107003 _ MALBACweiliangjiyinzuku ̄
   却没有得到有效扩增的问题ꎮ 针对这种问题ꎬ尚                            aisukuozengshijihechanpinshuomingshu _ zhongwenPM ̄
   未见有人进行过系统研究和提出可行性建议ꎬ特                             40c9e.pdf)ꎮ 根据说明书分别将扩增循环数设置
   别是对假阳性现象形成的原因和污染的主要来源                             为适合单条染色体扩增的 21 个循环和常规的 17 个
   还认识不足ꎬ这样不利于有针对性地提出外源污                             循环ꎮ 扩增完成后使用 1%琼脂糖凝胶电泳检测ꎮ
   染防控策略和改进实验方案ꎮ                                     1.2.3 染色体 MDA 扩增  分离后的包含全部染色
       本研究尝试使用单细胞测序的方式对小麦单                           体的 单 个 完 整 细 胞 和 单 条 小 麦 染 色 体 是 使 用
   条染色体分离后进行体外扩增和测序ꎬ在严格防                             Qiagen 公司的 REPLI ̄g Single Cell Kit(Cat No. / ID:
   控外源污染的前提下ꎬ针对实验过程中普遍遇到                             150343)来进行扩增ꎬ操作过程详情见使用说明书
   的假阳性问题进行研究ꎬ旨在探讨其可能来源和                             (https:/ / www. qiagen. com/ cn/ resources/ resourcedetail?
   形成原因ꎬ并针对单染色体测序存在的主要问题                             id= 38faca1c ̄64b0 ̄4281 ̄aab3 ̄aa8324bbd181&lang = en)ꎮ
   提出可行性建议ꎬ以期为植物单染色体测序的开                             扩增完成后ꎬ使用 1%琼脂糖凝胶电泳检测ꎮ 在使

   展提供经验和参考ꎮ                                         用试剂盒自行体外扩增的同时ꎬ使用安诺优达基
                                                     因科技有限公司提供的解离液在分离部分单条染
   1  材料与方法                                          色体后委托其进行体外扩增ꎮ
                                                     1.2.4 污染源排除实验  为了研究染色体扩增过
   1.1 植物材料                                          程中的假阳性现象以及对外源污染的可能来源进
       六倍体中国春小麦(2n = 6 × = 42) 种子ꎬ由中                 行排除ꎬ我们委托亿康基因公司使用 MALBAC 技
   国科学院遗传与发育生物学研究所王道文课题组                             术对实验使用的无菌水、PBS 溶液、离心管和试剂

   提供ꎮ                                               盒本身进行了检测ꎮ 实验设计如表 1 所示ꎮ
   1.2 方法                                            1.2.5 SCoT 分子标记检测  由于 SCoT 分子标记是
   1.2.1 小麦中期染色体制备和单条染色体分离  将                        一种目标起始密码子多态性标记ꎬ因此可以用来
   六倍体中国春小麦种子用冷水于 4 ℃ 冰箱浸泡1 d                        检测外源污染物是来自其他外源物种基因还是因
   后ꎬ置于 25 ℃ 下避光培养ꎬ当其根尖长至 1.5 ~ 2.0                  引物多聚体形成的ꎮ SCoT 引物是根据 Collard &
   cm 时ꎬ用锋利的刀片将其切下ꎬ用 0.1%秋水仙素                        Mackill (2009) 和 Luo et al.(2011) 公布的引物序
   预处理 3 hꎬ 无 菌 水 洗 净 后 用 卡 诺 固 定 液 ( 冰 醋            列来合成ꎮ 本研究用于单染色体扩增产物的 PCR
   酸 ∶ 纯 酒 精 = 1 ∶ 3) 于 低 温 下 固 定 5 minꎬ 转 入         检测的 SCoT 引物如表 2 所示ꎮ
   70%酒精中ꎬ4 ℃ 冰箱保存ꎮ 使用时用镊子取出所                            使用 20 μL 反应体系:2×Taq PCR Mix 10 μL、
   需数量的根尖ꎬ用无菌水冲洗 3 遍ꎬ控干水分ꎮ 分                         扩增产物(稀释 1 000 倍ꎬ约 30 ngμL ) 1.0 μL、
                                                                                          ̄1
                                                                 ̄1
   别加入体积比 4%和 3%的纤维素和果胶酶 20 μLꎬ                      10 μmolL 引物 0.8 μL、超纯水 8.2 μLꎮ 反应程
   37 ℃ 酶 解 45 minꎬ 酶 解 完 成 后ꎬ 用 无 菌 水 冲 洗           序:94 ℃ 预变性 5 minꎻ94 ℃ 变性 45 sꎬ50 ℃ 退火 1
   3 遍ꎬ控干水分ꎬ滴加 10 μL 卡宝品红染液ꎬ用枪头                      minꎬ72 ℃ 延 伸 2 minꎬ循 环 35 次ꎻ72 ℃ 延 伸 10
   将根尖捣碎ꎬ略放置后进行压片ꎮ 先将压片完成                            minꎮ 取 8 μL 扩 增 产 物ꎬ使 用 2% 的 琼 脂 糖 电 泳
   后的玻片置于-70 ℃ 超低温冰箱中放置 30 minꎬ再                     检测ꎮ
   迅速揭掉盖玻片ꎬ置于倒置显微镜下观察和使用微                            1.2.6 Southern 杂交鉴定  将小麦全基因组 DNA
   细玻璃针法进行显微分离(Nikon Ti ̄S 研究级倒置                      酶切产物与染色体扩增产物及阴性对照一起进行
   显微操作系统)ꎮ 在分离单条染色体的同时ꎬ也分                           电泳ꎬ并通过印记杂交的方式转移至带正电荷的

   离包含全部中期染色体的单个完整细胞作为对照ꎮ                            Hybond 尼龙膜上ꎬ小麦全基因组 DNA 经酶切、标
   1.2.2 染色体 MALBAC 扩增  分离后的包含全部                     记后作为探针进行杂交ꎮ 具体操作步骤参照罗氏
   染色体的单个完整细胞和单条小麦染色体是使用                             公司生产的“DIG High Prime DNA Labeling and De ̄
   亿康公司的 MALBAC 微量基因组快速扩增试剂盒                         tection Starter ̄KitⅠ(Roche)”试剂盒说明书进行ꎮ
   (KT110700324)来进行扩增ꎮ 操作过程详情见使用                     1.2.7 高通量测序  选择小麦染色体假阳性扩增

   说 明 书 ( http:/ / www. yikongenomics. com/ upload /  产物ꎬ 构建单细胞基因组 MDA 类型文库ꎬ 文库质
   17   18   19   20   21   22   23   24   25   26   27