Page 79 - 《广西植物》2020年第8期
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1 1 3 4                               广  西  植  物                                         40 卷
   带常绿阔叶林ꎬ保存较为完好( 王峥峰等ꎬ2000ꎻ叶                        1999)ꎬ在引物前后随机添加若干碱基ꎬ组合成不
   万辉等ꎬ2008)ꎮ 叶片 N ∶ P 反映了土壤氮磷的相                     同引物ꎬ对用于选择性扩增引物进行筛选ꎬ通过聚
   对有效性ꎬ当 N ∶ P>16 时ꎬ则表现为 P 限制( 刘兴                   丙烯酰胺凝胶电泳共筛选出 6 对符合实验条件的
   诏等ꎬ2010)ꎮ 由于地处南亚热带地区ꎬ鼎湖山大                         引物对ꎬ用于选择性扩增( 表 1):E3 / H ̄M2、E5 / H ̄
   样地受高温多雨的气候条件影响ꎬ土壤风化和土                             M2、E6 / H ̄M1、E8 / H ̄M1、E8 / H ̄M5、E9 / H ̄M2ꎮ 扩
   壤 P 流失状况严重ꎬ造成该地区土壤 P 缺乏( 邵宜                       增产 物 送 至 广 州 艾 基 生 物 技 术 有 限 公 司 利 用

   晶等ꎬ2017) 导致该地区叶片 N ∶ P 普遍高于 20ꎬ                   HiSeq2500 平台进行高通量测序ꎮ
   证明存在低 P 限制( Hedinꎬ 2004)ꎮ 此外ꎬ莫江明                  1.2 环境数据信息
   等(2000)通过研究鼎湖山南亚热带常绿阔叶林中                              该研究中土壤环境及物种信息均来自鼎湖山
   植物营养元素含量的分配格局ꎬ发现磷对南亚热                             大样地的长期监测数据ꎮ 研究对象锥所在小样方
   带常绿阔叶林植物生产力起最主要的限制作用ꎮ                             的土壤理化性质、地形因子来源于 2005 年样方建
       锥(Castanopsis chinensis)ꎬ壳斗科锥属ꎬ常绿阔            立时测量的数据ꎬ该研究分析使用的土壤有效磷
   叶乔木ꎮ 雌雄同株ꎬ风媒传粉ꎬ根据鼎湖山站的物                           数据(apꎬ mgkg )经过 2014 年最新的土样分析
                                                                      ̄1
   候记录ꎬ鼎湖山锥的花期为 3 月—4 月ꎬ果期为 5                        校正(Chen et al.ꎬ 2016)ꎮ
   月—11 月ꎮ 锥在鼎湖山大样地中的重要值排位第                          1.3 数据处理

   一ꎬ是森林生态系统中的重要建群种ꎬ对群落构建                                (1)利用 FastQC 0.11.7 软件(http:/ / www.bioin ̄
   及生 物 多 样 性 维 持 具 有 重 要 意 义 ( 叶 万 辉 等ꎬ             formatics.babraham.ac.uk / projects/ fastqc / )对测序后
   2008)ꎮ 目前对锥的研究主要集中在种子萌发与                          得到的原始数据进行质量检验ꎬ通过 FASTX_Toolkit
   扩散(杨期和等ꎬ2005ꎻ杜彦君等ꎬ2006)、种群动态                      软件(http:/ / hannonlab.cshl.edu / fastx_toolkit/ ) 去除
   (彭少麟和方炜ꎬ1995ꎻ张咏梅等ꎬ2003) 及遗传分                      低质量及重复序列ꎬ去除低质量的 readsꎬ使用 fastq_
   化(王峥峰等ꎬ2001ꎻ刘孟等ꎬ2017) 等方面ꎬ研究地                     quality_ filter 命 令ꎬ 设 置 最 小 质 量 阈 值 ( Minimum
   点多集中于鼎湖山ꎬ但对其受环境胁迫因子影响                             Quality Threshold ) 为 33ꎬ 最 小 长 度 ( Minimum
   下的分子响应机制研究仍较为缺乏ꎮ 本研究利用                            Length)为 80ꎻ去除重复序列ꎬ使用fastx_collapser命
   高通量测序技术结合生物信息学分析手段ꎬ为锥                             令ꎬ默认参数ꎮ (2)对质控后所得的序列利用 Stacks
   自制遗传模板序列ꎬ并探寻其对土壤限制性因子                             软件 ( http:/ / catchenlab. life. illinois. edu / stacks/ ) 中

   磷的响应基因和这些基因所涉及的生物学功能以                             的 process_radtags 命令根据 barcode 序列进行样本
   及参与的代谢途径ꎬ以期为群落生态学中受环境                             拆分ꎬ再利用 dDocent 软件(http:/ / ddocent.com/ as ̄
   影响产生的分子进化机制提供理论依据ꎮ                                sembly / )进行序列拼接ꎮ (3) 利用 Bowtie2 软件ꎬ将
                                                     个体序列信息比对到拼接的模板序列上( http:/ /
   1  材料与方法                                          bowtie ̄bio. sourceforge. net/ bowtie2 / index. shtml )ꎮ
                                                     (4) 环 境 因 子 与 个 体 基 因 序 列 的 相 关 性ꎬ 利 用
   1.1 DNA 提取和 F ̄MSAP 实验                             SPSS19.0 软件进行 Person 相关分析ꎬ筛选显著相关
       样品采自鼎湖山大样地ꎬ共采集 381 个锥个                        基因(P<0.05)ꎮ (5)利用 R 3.4.2 对所得基因利用

   体样品ꎬ每个体取不同部位新鲜叶片ꎬ利用改良的                            已有模式植物拟南芥基因注释信息数据库进行比
   CTAB 法进行 DNA 提取ꎮ 利用 Hap Ⅱ、Msp I 与                 对ꎬ完成 GO 功能注释及 KEGG 代谢通路富集分析ꎮ
   EcoR I 对基因组 DNA 进行双酶切ꎻ再将酶切产物
   连上接头ꎬ设计并筛选引物进行预扩增ꎬ利用荧光                            2  结果与分析
   标记的引物进行选择性扩增ꎮ 该实验参考刘孟等
   (2017)的锥 F ̄MSAP 扩增优化体系ꎮ 在 EcoR I、                 2.1 模板序列拼接
   Hpa Ⅱ / Msp I 通 用 引 物 的 基 础 上 ( Xiong et al.ꎬ         原始测序数据经过质量过滤及样本拆分后ꎬ
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