Page 174 - 《广西植物》2023年第12期
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2 3 4 0                                广  西  植  物                                         43 卷
            氮代谢和细胞质 pH 值ꎬ以及参与渗透调节和信号                           测定丙二醛( malondialdehyde ꎬ MDA) 含量李合生
            转导等途径提高植株对逆境的适应能力( 贾琰等ꎬ                            (2012)ꎻ抗坏血酸过氧化物酶(ascorbate peroxidaseꎬ
            2014ꎻ张海龙等ꎬ2020)ꎮ 在盐胁迫中ꎬGABA 作为                     APXꎬU  g  min  ̄1  FW) 的 测 定 参 照 Nakano 和
                                                                          ̄1
            信号物质或临时氮库ꎬ通过调节植株的抗氧化能                              Asada( 1981) 的 方 法ꎻ 还 原 型 抗 坏 血 酸 ( ascorbic
            力和改善叶片的光合特性ꎬ对植物的耐盐性产生                              acidꎬ AsA)、脱氢抗坏血酸(dehydroascorbateꎬ DHA)

            重要影响( Li et al.ꎬ 2016ꎻ Ramesh et al.ꎬ 2017ꎻ        的含量测定参照杨颖丽等(2018) 的方法ꎻ脯氨酸
            Kaspal et al.ꎬ 2021)ꎮ 本研究以种子引发和辣椒耐                 ( prolineꎬ Pro )、 过 氧 化 氢 ( hydrogen peroxideꎬ
            盐性为研究要点ꎬ采用生物量和生理生化分析方                              H O )、超氧阴离子(superoxide anionꎬ O ) 的含量
                                                                                                    -
                                                                2  2                               2
            法ꎬ通过研究 GABA 种子引发处理对盐胁迫下辣                           和超氧化物歧化酶(superoxide dismutaseꎬ SODꎬU
                                                                 ̄1                                           ̄1
            椒植株生长和生理生化的影响ꎬ拟探讨:(1) GABA                         g FW)、 过 氧 化 物 酶 ( peroxidaseꎬ PODꎬ U  g
                                                                                                  ̄1
            种子引 发 处 理 对 辣 椒 植 株 耐 盐 性 的 影 响ꎻ ( 2)              FW)、过氧化氢酶(catalaseꎬ CATꎬUg FW)、谷胱
            GABA 种子引发处理提高辣椒植株耐盐性的最佳                            甘肽还原酶(glutathione reductaseꎬ GRꎬUg FW)
                                                                                                        ̄1
            处理浓度ꎻ(3) GABA 种子引发处理提高辣椒植株                         的活性测定均采用试剂盒法( 索莱宝科技有限公
            耐盐性的作用机制ꎮ                                          司)ꎬ酶活性 U 指在最适条件下 1 min 催化 1 μmol
                                                               底物转化的酶量ꎮ
            1  材料与方法                                           1.2.3 叶绿素含量的测定  每处理随机选取 5 株ꎬ选
                                                               距生长点第 2 ~ 5 片完全展开叶ꎬ使用 SPAD ̄502 仪
            1.1 材料和处理                                          (柯尼卡美能达)测定叶绿素含量(Wakiyamaꎬ 2016)ꎮ
                 供试材料为‘ 茂蔬 360’ 朝天椒ꎬγ ̄氨基丁酸                     1.2.4 叶绿素荧光参数的测定  叶绿素荧光参数
            (GABA)购于上海生工商贸有限公司ꎮ                                值采 用 FluorPen 叶 绿 素 荧 光 分 析 仪 ( Czech
            1.1.1 种子引发处理  γ ̄氨基丁酸( GABA) 引发处                    RepublicꎬPhoton Systems Instruments) 测定ꎬ每处理
            理设置 0 ( 蒸 馏 水ꎬ T0)、1. 0 ( T1)、2. 0 ( T2)、4. 0      随机选择 6 株ꎬ每株选取植株顶端完全展开叶片
            (T4)、6.0( T6)、8.0( T8) μmolL 6 个浓度ꎮ 选            测定 F / F ꎬ植株暗室放置 20 min 后测定其他叶
                                             ̄1
                                                                     v  m
            取大小一致、籽粒饱满的辣椒种子 1.8 g ( 约 100                      绿 素 荧 光 参 数 值ꎬ 即 潜 在 最 大 量 子 产 量
            粒)置于不同浓度的 GABA 溶液中ꎬ种子质量( g)                        (F ′ / F ′)、稳态光化学淬灭( qP_Lss)、稳态非光
                                                                 v
                                                                     m
            与溶液体积(mL) 比为 1 ∶ 5( 吴凌云等ꎬ2017)ꎬ在                   化学淬灭( NPQ_Lss)、稳态光量子效率( QY_Lss)
            20 ℃ 黑暗条件下引发 24 hꎮ 引发结束后ꎬ用蒸馏                       和荧光衰减率(Rfd)ꎮ
            水洗净种子残余的 GABAꎬ吸干表面水分ꎬ置于鼓                           1.2.5 Na 、K 的含量测定  每处理随机选取 5 株ꎬ
                                                                          +
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            风干燥箱中 28 ℃ 回干至原始质量ꎮ 重复 3 次ꎮ                        蒸馏水清洗后ꎬ分别取烘干后的根、茎、叶进行分
            1.1.2 盐胁迫处理  将引发和未引发的种子在正                          析ꎮ 采用浓硫酸 -H O 消煮法( 鲍士旦ꎬ2000) 消
                                                                                 2  2
            常基质内催芽后ꎬ播种至 15 孔盘穴中ꎬ正常管理ꎬ                          解干样ꎬ滤液采用火焰原子吸收法( 鲍士旦ꎬ2000)
            以未进行种子引发处理的植株为对照( CK)ꎮ 待                           测定 K 、Na 的含量ꎮ
                                                                     +
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            植株长至 4 ~ 6 叶时ꎬ每两天每株用 50 mL NaCl 溶                  1.3 数据分析
            液 (100 mmolL ) 浇灌ꎬ14 d 后取样分析ꎮ 每处                     在 Excel 2019 软件中进行数据常规处理ꎬ用
                             ̄1
            理 20 株ꎬ重复 3 次ꎮ                                     SPSS 25.0 软件对数据进行单因素方差分析ꎬ采用
            1.2 方法                                             Duncan’s 法进行多重比较ꎬ运用 SPASSAU 在线平
            1.2.1 植株生长情况  每个处理随机选取 5 株辣椒                       台进行灰色关联度分析ꎮ
            植株ꎬ测定每株植株的株高和根、茎和叶的鲜重及

            干重ꎮ                                                2  结果与分析
            1.2.2 酶活性及代谢物质含量的测定  每处理随机
            选取 5 株ꎬ取植株上部完全展开叶用于分析ꎮ 可溶                          2.1 不同浓度 GABA 种子引发处理对盐胁迫下辣
            性蛋白含量的测定参考 Bradford(1976) 的方法ꎻ采                    椒生长的影响
            用蒽酮比色法测定可溶性糖含量ꎬ硫代巴比妥酸法                                 不同浓度 GABA 种子引发处理对盐胁迫下辣
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