Page 87 - 《广西植物》2024年第7期
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7 期                曾婉俐等: 烟草香气相关基因 CRISPR / Cas9 编辑突变体库的构建                                 1 2 8 7

                                                               编辑突变体库的方法中ꎬ共转化率、编辑率和脱靶
                                                               编辑率是研究人员比较关注的问题ꎮ 本研究结果
                                                               表明ꎬ烟草的共转化率可以达到 77%ꎬ因此可以获
                                                               得大多数载体的转基因烟草ꎬ这保证了烟草基因
                                                               突变体库的高覆盖率ꎮ 烟草的转基因通过愈伤组
                                                               织转化实现ꎬ单次转化的基因编辑率高ꎮ 本研究
                                                               证明ꎬ共转化多基因编辑载体同样可以实现较高
                                                               的基因编辑率(89.6%)ꎮ CRISPR ̄Cas9 基因编辑
                                                               技术潜在的脱靶作用是制约其应用的一个主要因
                                                               素ꎮ 本研究进行了脱靶位点分析ꎬ结果显示ꎬ77 个
                      图 4  一个 sgRNA 的脱靶编辑                      sgRNA 中只有 1 个位点产生了脱靶编辑ꎬ这说明
                    Fig. 4  Off ̄target editing of one sgRNA    CRISPR ̄Cas9 对靶位点的识别具有很强的特异性ꎮ
                                                               由于本研究未进行全基因组测序分析ꎬ所以不能
            3  讨论                                              排除编辑植株仍然存在脱靶编辑的可能性ꎮ 值得
                                                               提及的是ꎬ在编辑植物中总能筛选到 Cas9 基因与
                 烟草的香味来源于在烟叶片中合成并累积的                           编辑位点位于不同染色体上的植株ꎬ在育种实践
            香味化学成分ꎮ 香味相关成分的含量和种类受到                             中可以通过遗传分离和纯化选择去除转基因标签
            相关代谢途径基因的类型及表达水平的控制ꎮ 受                             或脱靶编辑位点ꎮ
            限于烟草种质资源遗传基础方面的研究不足ꎬ烟
            草香味品质相关代谢物合成的基因尚未被大规模                              4  结论
            鉴定ꎮ 烟草基因组测序和基因功能注释的完成为
            烟草香味的研究提供了新动力ꎮ 本研究利用生物                                 本研究利用 CRISPR / Cas9 技术成功构建了烟
            信息学分析获得了 100 个与烟草香味品质相关的                           草香味相关基因的突变体库ꎬ表明 CRISPR / Cas9
            基因ꎬ研究这些基因的功能可为后续改善烟草香                              基因编辑技术高通量编辑烟草基因可用于构建烟
            味品质提供基因资源ꎮ                                         草突变体库ꎬ该方法具有共转化率高、靶向编辑率
                 确定某个基因是否与烟草香味相关并对其功                           高和脱靶编辑率低等特点ꎮ 本研究为烟草香味功
            能进行解析很大程度上依赖于相关基因突变体的                              能基因的研究提供了遗传资源ꎬ为烟草香味重要
            研究ꎮ 基于 CRISPR/ Cas9 的基因编辑技术日趋成                     性状的分子改良提供了种质资源ꎮ 该技术方法并
            熟ꎬ利用该技术研究和创制不同香味品质的烟草种                             不是仅限于构建烟草香味品质相关基因的突变体
            质资源对于烟草工业的可持续发展尤为重要ꎮ 利                             库ꎬ而是可用于在烟草中构建研究人员感兴趣的
            用 CRISPR ̄Cas9 基因编辑技术高通量构建突变体                       任何性状的基因突变体库ꎬ这将加速烟草功能基

            库已经应用于水稻( Lu et al.ꎬ 2017ꎻ Meng et al.ꎬ            因的研究ꎮ
            2017ꎻ Chen et al.ꎬ 2022 )、 番 茄 ( Jacobs et al.ꎬ
            2017)、玉米( Liu et al.ꎬ 2020) 和大豆( Bai et al.ꎬ
                                                               参考文献:
            2020)等二倍体植物ꎮ 本研究成功将 CRISPR ̄Cas9
            基因编辑技术应用于四倍体植物烟草突变体库的
                                                               BAI Mꎬ YUAN Jꎬ KUANG Hꎬ et al.ꎬ 2020. Generation of a
            构建ꎮ 最近ꎬCRISPR ̄Cas9 基因编辑技术已成功应
                                                                 multiplex mutagenesis population via pooled CRISPR ̄Cas9 in
            用于油菜突变体库的构建(He et al.ꎬ 2023)ꎬ这也是
                                                                 soya bean [J]. Plant Biotechnol Jꎬ 18(3): 721-731.
            该技术首次应用于十字花科的异源四倍体植物ꎮ
                                                               CHEN Kꎬ KE Rꎬ DU Mꎬ et al.ꎬ 2022. A FLASH pipeline for
            本研究的编辑对象烟草是茄科的异源四倍体植物ꎬ
                                                                 arrayed CRISPR library construction and the gene function
            该突变体库的成功构建为在茄科多倍体植物中开
                                                                 discovery of rice receptor ̄like kinases [ J]. Mol Plantꎬ
            展高通量靶向编辑提供了一个成功的案例ꎮ                                  15(2): 243-257.
                 在利用农杆菌共转化获得 CRISPR ̄Cas9 基因                    CHEN Kꎬ WANG Yꎬ ZHANG Rꎬ et al.ꎬ 2019. CRISPR/ Cas
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