Page 82 - 《广西植物》2025年第10期

１ ８ １ ２ 广 西 植 物 ４５ 卷
ｄｒｉｖｉｎｇ ｔｈｉｓ ｃｏｌｏｒ ｃｈａｎｇｅ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｅｒｅ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｓ: (１) Ｉｎ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｔｏ ｔｈｅ ｉｎｉｔｉａｌ ｓｔａｇｅ (Ｄ１)ꎬ ｔｈｅ ｂｒｉｇｈｔｎｅｓｓ ｖａｌｕｅ
(Ｌ) ａｎｄ ｒｅｄ ｃｏｌｏｒ ｖａｌｕｅ (ａ) ｏｆ ｔｈｅ ｐｅｔａｌｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｍｉｎｉｓｈｅｄ ａｆｔｅｒ ４８ ｈｏｕｒｓ ｏｆ ｐｒｅｓｓｉｎｇ (Ｄ３). Ｃｏｎｃｕｒｒｅｎｔｌｙꎬ
ｔｈｅ ｐｅｔａｌｓ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｄａｒｋ ｐｕｒｐｌｉｓｈ￣ｒｅｄ ｈｕｅꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ ４.００
￣１ ￣１
ｍｇｇ ｔｏ ２.７３ ｍｇｇ ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ ｔｈｅ ｐｒｏｃｅｓｓ. (２) Ｔｈｅ ＲＮＡ￣ｓｅｑ ａｎａｌｙｓｉｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｐｒｅｄｏｍｉｎａｎｔ ｅｎｒｉｃｈｅｄ ｔｅｒｍ
ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ Ｇｅｎｅ Ｏｎｔｏｌｏｇｙ (ＧＯ) ｄａｔａｂａｓｅ ｗａｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｐｒｉｍａｒｙ ｅｎｒｉｃｈｅｄ ｐａｔｈｗａｙ
ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｋｙｏｔｏ Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅｓ (ＫＥＧＧ) ｄａｔａｂａｓｅ ｐｅｒｔａｉｎｅｄ ｔｏ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ. (３)
Ｎｉｎｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｇｅｎｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ. Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｌｌｙꎬ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ
ｆｌａｖｏｎｏｉｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｐａｔｈｗａｙꎬ ｔｈｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＲｒＣＨＳ１ꎬ ＲｒＣＨＳ２ꎬ ＲｒＣＨＳ３ꎬ ＲｒＣＨＩꎬ ＲｒＤＦＲ１ꎬ ＲｒＤＦＲ２ꎬ ａｎｄ
ＲｒＡＮＳ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｒｅｄｕｃｅｄ. Ｃｏｎｖｅｒｓｅｌｙꎬ ｉｎ ｔｈｅ ｐｈｅｎｙｌｐｒｏｐａｎｏｉｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｐａｔｈｗａｙꎬ ｔｈｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｌｅｖｅｌ ｏｆ
ＲｒＰＡＬ１ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｅｌｅｖａｔｅｄꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈａｔ ｏｆ ＲｒＰＡＬ２ ｗａｓ ｍａｒｋｅｄｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ａｔ ｔｈｅ Ｄ３ ｓｔａｇｅ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ Ｄ１
ｓｔａｇｅ. Ｉｎ ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎꎬ ｔｈｅ ｄｒｙｉｎｇ ａｎｄ ｐｒｅｓｓｉｎｇ ｐｒｏｃｅｓｓ ｅｘｅｒｔｓ ａ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｅｇｒａｄａｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓ ｉｎ ‘Ｃａｒｏｌａ’
ｐｅｔａｌｓꎬ ｃｏｎｃｕｒｒｅｎｔｌｙ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ｐｅｔａｌ ｃｏｌｏｒ ｄａｒｋｅｎｉｎｇ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｔｈｅ ｄｒｙｉｎｇ ａｎｄ ｐｒｅｓｓｉｎｇ ｐｒｏｃｅｓｓ ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ ｔｈｅ
ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｇｅｎｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｆｌａｖｏｎｏｉｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ｐａｔｈｗａｙ ｉｎ ｐｅｔａｌｓꎬ ｔｈｅｒｅｂｙ ｉｍｐｏｓｉｎｇ ｌｉｍｉｔａｔｉｏｎｓ ｏｎ
ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: ａｒｔ ｏｆ ｐｒｅｓｓｅｄ ｆｌｏｗｅｒꎬ ｒｏｓｅ (Ｒｏｓａ ｒｕｇｏｓａ)ꎬ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅꎬ ＲＮＡ￣ｓｅｑꎬ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎꎬ ｆｌａｖｏｎｏｉｄ

压花艺术(ａｒｔ ｏｆ ｐｒｅｓｓｅｄ ｆｌｏｗｅｒ) 是一种将植物 １９９６)ꎮ 花青苷的合成与降解受到多种因素影响ꎬ
的花、叶、茎、根等素材进行干燥压制ꎬ并将干燥压 适宜的低温、光照条件均可促进花青苷的积累( Ｙｕ
制后的植物素材制作成观赏植物制品的艺术形式 ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０２２ꎻ Ｚｈｏｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０２２)ꎮ 在高温、干燥条
(周徐子鑫等ꎬ２０２４)ꎮ 压花艺术的特色在于不利 件下ꎬ植物会通过合成花青苷等抗氧化物质以应
用画笔而是利用植物素材本身的色彩、形状和质 对胁迫ꎬ但高温和干燥条件同样也会破坏离体植
感来进行艺术作品创作ꎮ 然而ꎬ植物在离体之后ꎬ 物器官中的花青苷ꎬ使花青苷发生降解( 王梦瑶
其内部会产生理化性质的变化ꎬ使植物易发生色 等ꎬ２０２４)ꎮ 另外ꎬ花青苷在酸性条件下更加稳定ꎬ
变(王冰等ꎬ２０２３ꎻ 赵明等ꎬ２０２３)ꎮ 因此ꎬ了解植 当环境 ｐＨ 值由小变大时ꎬ花青苷的颜色由红色转
物素材在干燥压制中的变色机理ꎬ以及探究减缓 变为紫红或紫蓝色(左玉和田芳ꎬ２０１４)ꎮ 近年来ꎬ
植物素材变色的技术方法对于创作高质量的压花 花青苷生物合成的分子调控网络研究取得重要突
艺术作品具有重要意义ꎮ 破ꎮ 在转录调控层面已鉴定出包括 ＭＹＢ、ｂＨＬＨ、
植物色素是决定植物颜色表型的主要因素ꎮ ＷＤ４０ 三大核心调控因子ꎬ以及 ｂＺＩＰ、ＮＡＣ、ＷＲＫＹ
植物色素可分为脂溶性色素和水溶性色素ꎬ脂溶 等多个辅助调控家族在内的转录调控体系( Ｙｅ ｅｔ
性色素主要为叶绿素和类胡萝卜素ꎬ水溶性色素 ａｌ.ꎬ ２０１６)ꎮ 这些调控因子既可以独立结合靶基
主 要 为 花 青 苷 ( Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１８ꎻ Ｚｈａｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ 因启动子区的顺式作用元件直接激活或抑制生物
２０２２)ꎮ 花青苷来源于苯丙烷代谢途径、类黄酮生 合成基因的表达ꎬ也能物理互作形成多聚复合体
物合成途径和花青苷代谢途径ꎬ初始底物 Ｌ￣苯丙 协同调控下游靶标ꎬ最终通过级联调控作用精确

氨酸经过苯丙氨酸裂解酶( ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｉｎｅ ａｍｍｏｎｉａ 控制花青苷的生物合成与组织特异性积累(Ｋａｔｉａ ＆
ｌｙａｓｅꎬＰＡＬ)等酶的催化后ꎬ一部分产物进入类黄酮 Ｃｈｉａｒａꎬ ２０１１)ꎮ 此外ꎬ花青苷的积累还与蛋白介

代谢 途 径ꎬ 在 查 尔 酮 合 成 酶 ( ｃｈａｌｃｏｎｅ ｓｙｎｔｈａｓｅꎬ 导的修饰化有关ꎬ苹果( Ｍａｌｕｓ ｄｏｍｅｓｔｉｃ) 着色机制
ＣＨＳ)、查尔酮异构酶(ｃｈａｌｃｏｎｅ ｉｓｏｍｅｒａｓｅꎬＣＨＩ)、二 中 ＭｄＳｌＺ１ 的 苏 素 化 修 饰 和 菊 花 ( Ｄｅｎｄｒａｎｔｈｅｍａ

羟基 黄 酮 醇 还 原 酶 ( ｄｉｈｙｄｒｏｆｌａｖｏｎｏｌ ４￣ｒｅｄｕｃｔａｓｅꎬ ｍｏｒｉｆｏｌｉｕｍ) ＣｍＭＹＢ６ 的启动子甲基化水平都会对
ＤＦＲ) 和 花 青 素 合 成 酶 ( ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｄｉｎ ｓｙｎｔｈａｓｅꎬ 花青苷的积累产生影响( Ｊｉａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０２２ꎻ Ｔａｎｇ
ＡＮＳ)催化后形成无色且不稳定的花青素ꎬ这些花 ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０２２)ꎮ

青素经过类黄酮 ３￣Ｏ￣糖基转 移 酶 ( ＵＤＰ￣ｇｌｕｃｏｓｅ: 目前ꎬ有研究对采后压花素材的保色方法和
ｆｌａｖｏｎｏｉｄ ３￣Ｏ￣ｇｌｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅꎬＵＦＧＴ)等酶的修饰 保色效果的定量化分析进行了探索ꎮ 例如ꎬ桂花
后形成 有 色 且 稳 定 的 花 青 苷 ( Ｂｏｓｓ ＆ Ｒｏｂｉｎｓｏｎꎬ (Ｏｓｍａｎｔｈｕｓ ｆｒａｇｒａｎｓ) 叶片的适宜保色配方为 ５％