Page 183 - 《广西植物》2025年第4期
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4 期 周毅航等: 杜氏盐藻的基础生物学和开发应用研究进展 7 9 7
氏盐藻的生长、光合作用、呼吸作用和 β ̄胡萝卜素 phosphate dehydrogenaseꎬGAPDH 或 G3PDH)基因的
的生物合成均有显著影响ꎮ 在稳定生长期ꎬ较高 启动子被克隆ꎬ并用于驱动双丙磷抗性(bar)基因和
浓度的 MI(1 080 mgL )、6 ̄BA(30 mgL ) 和 人血管能抑素 N 末端片段(canstatinꎬCan ̄N)在杜氏
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 ̄1 盐藻中表达ꎬ结果表明 bar 基因被 DsGAPDH 的启动
ABA(100 μmolL ) 促进了 β ̄胡萝卜素的积累ꎬ
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但较低浓度的 MI(540 mgL )和 6 ̄BA(0.6 mg 子驱动转录且整合到 D. salina 转化体的基因组中ꎮ
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L ) 会 抑 制 β ̄胡 萝 卜 素 的 积 累ꎬ 生 长 素 ( NAA、 Can ̄N 能在转基因杜氏盐藻中表达ꎬ证明 DsGAPDH
IAA、2ꎬ4 ̄D)和 GA 在无论高浓度还是低浓度时对 基因启动子适用于驱动外源基因在转基因杜氏盐
β ̄胡萝 卜 素 的 积 累 均 有 抑 制 作 用ꎮ MI、 IAA 和 藻中表达(Jia et al.ꎬ 2012)ꎮ D. salina 硝酸还原酶
ABA 对 D. salina 生长的促进作用强于其他 4 种激 (nitrate reductaseꎬDsNR) 的表达可受硝酸盐诱导ꎬ
 ̄1  ̄1 但受铵的抑制ꎮ 用 DsNR 的启动子驱动 bar 基因在
素ꎬ其最优浓度分别为 552 mgL 、0.14 mgL 、
0.22 mgL ꎬ并且优化后的植物激素组合可使生 D. salina 中表达ꎬbar 基因的表达可被硝酸盐诱导ꎬ
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物量提高 19%(Lv et al.ꎬ 2018)ꎮ 但受铵抑制ꎬ预示 DsNR 的启动子可用于调控转基
1.3 分子生物学研究进展 因杜氏盐藻中外源基因的表达( Li et al.ꎬ 2007)ꎮ
1.3.1 杜氏盐藻分子生物学研究工具和技术进展情 核酮糖 ̄1ꎬ5 ̄二磷酸羧化酶(rubisco) 的启动子可以
况 杜氏盐藻的基因组已经发布ꎬ它的细胞器基因 驱动 莱 茵 衣 藻 的 BCH 型 β ̄胡 萝 卜 素 羟 化 酶 在
组是大的环状分子ꎬ大约 60%是非编码 DNAꎬ是绿 D. salina 中表达(Simon et al.ꎬ 2016)ꎮ 为解决重组
藻门中最膨胀的细胞器 DNA 之一ꎻ其质体基因组是 蛋白低表达或不稳定表达的问题ꎬ结合反式激活转
目前基因库中最大的完整质体 DNA(ptDNA) 序列 录(TAT)和核定位信号(NLS)肽可以显著提高外源
(全长 269 kb)ꎬ并且线粒体和质体基因组都具有前 基因在 D. salina 系统中的转化率和表达水平ꎬ这为
所未有的细胞器 DNA 内含子密度ꎬ分别为约 1.5 个 促进杜氏盐藻生物反应器的应用和发展提供了一
内含子/ 基因和约 0.4 个内含子/ 基因(Smith et al.ꎬ 条有前景的途径(Feng et al.ꎬ 2023)ꎮ 以上分子生
2010)ꎮ 杜氏盐藻在分子水平上的研究日渐增多ꎬ 物学研究工具和技术手段为我们以杜氏盐藻为研
转录组、代谢组等组学技术已被广泛应用于杜氏盐 究载体ꎬ开展分子水平研究提供了极大的便利ꎮ
藻 的 研 究 ( He et al.ꎬ 2020ꎻ Zhu et al.ꎬ 2021ꎻ 1.3.2 杜氏盐藻耐盐分子机制研究进展情况 杜
Ramachandran et al.ꎬ 2023 )ꎬ RNA 干 扰 ( RNA 氏盐藻可以在极端高盐环境下生长ꎬ是研究植物
interferenceꎬRNAi) 技术已在杜氏盐藻中成功应用 高盐适应的理想模式生物ꎬ关于其耐盐分子机制
(Jia et al.ꎬ 2009ꎻ Srinivasan et al.ꎬ 2017a)ꎬ 利 用 的研究备受国内外学者瞩目ꎮ 在早期的研究中ꎬ
CRISPR 等技术对杜氏盐藻基因组进行编辑改造也 Fisher 等(1996) 研究发现 D. salina 质膜蛋白 p60
已实现(Feng et al.ꎬ 2020)ꎮ 在杜氏盐藻的基因工 是一种结构新颖的碳酸酐酶ꎬ转录水平受 CO 的调
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程操作中ꎬ外源基因表达的关键步骤是遗传转化ꎮ 控ꎬ并表现出嗜盐特性ꎮ 在高盐培养基中ꎬ这种酶
到目前为止ꎬ已经建立了几种针对杜氏盐藻的遗传 可能改善细胞对 CO 的吸收ꎮ 另外一种碳酸酐酶
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转化方法ꎬ包括农杆菌介导的遗传转化法(Simon et duplicated carbonic anhydrase 1( DCA1) 启动子中ꎬ
al.ꎬ 2016ꎻ Castellanos ̄Huerta et al.ꎬ 2022)、电转化 高度重复的 GT 序列参与了 D. salina 的盐诱导调
法(Velmurugan & Kodiveri Muthukaliannanꎬ 2023)、 控ꎬDsDCA1 启动子可能是一种新型的盐诱导元件
粒子轰击转化法(Tan et al.ꎬ 2005)和玻璃珠转化法 (Li et al.ꎬ 2010)ꎮ 热休克蛋白 Hsp90 被证明参与
(Feng et al.ꎬ 2007)ꎮ 了 D. salina 耐盐性的调控过程ꎬDsHsp90 的活性
在杜氏盐藻中实现基因高效表达的另一个主 和折叠对盐度的依赖性很小ꎬ表明 DsHsp90 是一
要手段是寻找强启动子来驱动基因表达ꎬ目前已找 种具有耐盐性的细胞内蛋白ꎬ可能在高渗或低渗
到多个此类启动子ꎮ CaMV35S 是高等植物中常用 休克期间抵抗细胞内短暂的盐波动中发挥作用
的强启动子ꎬ多项研究证明 CaMV35S 可以有效启动 (Chen XJ et al.ꎬ 2015)ꎮ Azachi 等(2002) 研究证
外源和内源性基因在杜氏盐藻中表达(耿德贵等ꎬ 明 D. salina 中受盐胁迫诱导的 β ̄酮脂酰辅酶 A 合
2002ꎻ Velmurugan & Kodiveri Muthukaliannanꎬ 酶 [β ̄ketoacyl ̄coenzyme A (CoA) synthaseꎬKcs]与
2023)ꎮ 甘 油 醛 ̄3 ̄磷 酸 脱 氢 酶 ( glyceraldehyde ̄3 ̄ 脂肪酸去饱和酶一起ꎬ可能通过调节细胞膜结构

