Page 58 - 《广西植物》2026年第1期
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5 4                                    广  西  植  物                                         46 卷
            豆兰属植物内生菌的研究已经有所展开ꎮ 其中ꎬ
            高景凯等(2019)、苗永美等(2022) 对广东石豆兰
            (B.kwangtungense)的内生细菌进行了分离鉴定以
            及抑菌活性分析ꎮ Liang 等(2022) 对天贵卷瓣兰
            的根、根状茎和根际土壤中的真菌群落和菌根真

            菌组成通过直接提取 DNA 测序进行了群落分析ꎬ
            但未对具体种类进行分离和鉴定ꎮ 同时ꎬ目前也
            有对于尼尔吉里石豆兰( B. neilgherrense)、短耳石
            豆兰 ( B. crassipes)、 B. exiguum、 B. bracteatum 和
            B. shepherdii 等石豆兰属不同组织间的内生真菌种

            类差 异 性 进 行 研 究 ( Sudheep & Sridharꎬ 2012ꎻ
            Sawmya et al.ꎬ 2013ꎻAdit et al.ꎬ2022)ꎬ但其内生真

            菌对植株的促生作用并未深入开展ꎮ
                 鉴于此ꎬ本研究采用组织块分离法对生长于
            不同海拔条件下天贵卷瓣兰内生真菌进行分离鉴
            定ꎬ拟解决以下问题:(1) 分离并获得天贵卷瓣兰
            不同组织内生真菌ꎻ(2)对不同组织内生真菌促生
            特性进行筛选ꎻ(3)探究内生真菌对天贵卷瓣兰移
            栽苗的生长是否具有促进作用ꎮ 本研究以期获得
                                                                A. 天贵卷瓣兰居群ꎻ B. 天贵卷瓣兰单株ꎮ
            一些具有潜在应用价值的内生真菌菌株ꎬ为进一                               A. Population of B. tianguiiꎻ B. Single plant of B. tianguii.
            步探讨天贵卷瓣兰与内生真菌的相互作用提供理                                       图 1  天贵卷瓣兰野外生境照片
            论基础ꎮ                                                 Fig. 1  Wild habitat photos of Bulbophyllum tianguii


            1  材料与方法                                           (2024)的方法利用组织块分离法进行内生真菌分
                                                               离ꎬ利用解剖刀切取植物组织ꎮ 其中ꎬ根和横走茎
            1.1 试验材料                                           切成长度为 0.5 cm 的小段ꎬ假鳞茎切成 0.5 cm ×
                 天贵卷瓣兰( 包括根、横走茎、假鳞茎、叶片)                        0.5 cm × 0.5 cm 的小块ꎬ叶片切成 0.5 cm × 0.5
            于 2023 年 11 月采自广西雅长兰科植物国家自然                        cm 的小块ꎬ将切下的组织块分别接种到 PDA 培养
            保护 区 ( 地 理 坐 标 为 24° 44′ 16″—24° 53′ 58″ N、        基上ꎬ每个器官各 5 个平板ꎬ每个平板放置 4 个组
            106°11′31″—106° 27′04″ E) 2 个 不 同 海 拔 ( 山 腰        织块ꎬ采自山顶、山腰的样本各选取了 80 个组织
            950 m 和山顶1 208 m)种群ꎮ 共 2 个样地ꎬ每个样                   块ꎬ共 160 个组织块ꎮ 置于培养箱中 28 ℃ 恒温培

            地采集 10 株左右ꎮ 自然生境见图 1ꎮ                              养ꎬ5 ~ 10 d 后ꎬ挑取组织边缘长出的菌丝转接至新
            1.2 试验方法                                           PDA 平板上进行纯化ꎮ 若菌落形态有异ꎬ则进行
            1.2.1 植物组织表面消毒  将植物表面清洗干净                          二次 转 接ꎬ 如 此 反 复 直 至 得 到 纯 菌ꎬ 再 接 种 至
            后吸干表面水分ꎬ称取植株根、横走茎、假鳞茎、叶                            PDA 平板上继续培养ꎬ4 ℃ 冰箱保藏ꎬ将每个组
            片 4 种器官各 1 gꎮ 在超净工作台中ꎬ将准备好的                        织块分离出的内生真菌进行统计ꎬ记录不同组织

            材料分别用 75%的酒精浸泡 30 sꎬ用无菌水清洗 3                       分离内生真菌的频率ꎬ其中分离频率( %) = ( 某
            次ꎬ再用 0.1%升汞分别浸泡 3、5、7 minꎬ用无菌水                     组织块中分离到的内生真菌总数 / 某组织总组织
            冲洗 5 次( 吸取 200 μL 最后 1 次洗涤水涂布于                     块数) ×100ꎮ
            PDA 平板ꎬ培养 3 ~ 5 dꎬ以检查植株表面消毒效                       1.2.3 内生真菌的形态学鉴定  将纯化后得到的

            果)ꎬ最后用无菌滤纸吸干组织表面水分ꎬ备用ꎮ                             菌种 进 行 分 离 培 养 5 ~ 8 d 后ꎬ 参 照 刘 艳 萍 等
            1.2.2 内生真菌分离纯化  按照 1.2.1 所得出的最                     (2024)的方法观察并记录培养得到的内生真菌菌
            佳消 毒 时 间 进 行 表 面 消 毒 后ꎬ 参 考 刘 艳 萍 等                落形态ꎬ指标主要包括菌落颜色、形状、生长特征
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