Page 116 - 《广西植物》2026年第4期
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科铭 生 物 技 术 有 限 公 司 生 产 的 过 氧 化 氢 酶
(catalaseꎬCAT) 测试盒( FY2ꎬ紫外分光光度法)、 2 结果与分析
超氧化物歧化酶( superoxide dismutaseꎬSOD) 测试
盒 ( GY1ꎬ 可 见 分 光 光 度 法 )、 过 氧 化 物 酶 2.1 水分亏缺对叶片水势及 Psa 增殖的影响
(peroxidaseꎬPOD) 测 试 盒 ( FY3ꎬ 可 见 分 光 光 度 亏缺组叶片水势在整个时期均显著低于高湿
法)、谷胱甘肽还原酶(glutathione reductaseꎬGR)测 组(P<0.05)ꎬ呈持续下降趋势ꎻ高湿组接菌后 7 天
试盒 ( A062ꎬ 紫 外 比 色 法) 和 苯 丙 氨 酸 解 氨 酶 内水势降低ꎬ之后回升( 图 1:A)ꎮ 接菌 1 天时两
( phenylalanine ammonia ̄lyaseꎬPAL) 测试盒( PAL ̄ 组病原菌数量无显著性差异ꎬ接菌 3 天后高湿组
2 ̄Yꎬ可见分 光 光 度 法) 测 定 CAT、SOD、POD、GR 显著高于亏缺组(P<0.05)ꎮ 接菌 12 天时ꎬ高湿组
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和 PAL 的酶活性ꎮ 叶片中病原菌密度高达 4.47×10 CFUcm ꎬ而亏
1.2.5 数据处理 采用 Origin 2019 作图ꎮ 两组计 缺组仅为 8.70× 10 CFUcm ( 约为高湿组 1 / 5)
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量数据比较采用 Student’ s t 检验统计学分析ꎬP< (图 1:B)ꎬ并且荧光分布明显少于高湿组( 图 1:
0.05 表示差异具有统计学意义ꎮ C)ꎬ表明水分亏缺可有效抑制 Psa 的侵染及增殖ꎮ
A. 叶片水势变化ꎻ B. Psa 增殖规律ꎻ C. 接菌 12 天时高湿组(左)和亏缺组(右)‘红阳’叶片荧光ꎮ ∗ 表示两组间差异显著(P<
0.05)ꎻ∗∗ 表示两组间差异极显著(P<0.01)ꎮ 下同ꎮ
A. Variations of leaf water potentialꎻ B. Psa proliferation patternꎻ C. Leaf fluorescence of ‘Hongyang’ at 12 days after inoculationꎬ shown for
the HHG (left) and the WDG (right). ∗indicates a significant difference between the two groups (P < 0.05)ꎻ ∗∗ indicates a highly
significant difference between the two groups (P < 0.01). The same below.
图 1 高湿组与亏缺组‘红阳’接种 Psa 后叶片水势变化及 Psa 增殖规律
Fig. 1 Variations of leaf water potential and Psa proliferation pattern in ‘Hongyang’
after Psa inoculation between the HHG and WDG

