Page 46 - 《广西植物》2026年第4期
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6 0 4                                  广  西  植  物                                         46 卷
            果肉作为对照ꎬ所有处理均重复 3 次ꎬ用于验证                            (TransGen)反转录的 cDNA 为模板ꎬActin 为内参
            ABA 处理下 AcPAL 基因在果实成熟软化过程中的                        基 因ꎬ 参 照 TransStart ®  Top Green qPCR SuperMix
            表达特征ꎮ                                              (TransGen)操作指南配置反应液进行 qRT ̄PCR 分
                 根 据 AcPAL 家 族 基 因 的 序 列 特 征ꎬ 在                析ꎮ Eppendorf 荧光定量 PCR 仪的扩增程序包括 1
            DNAMAN 软件上设计定量 PCR 引物ꎬ引物信息见                        个预变性(94 ℃ 30 s)、40 个循环扩增(94 ℃ 5 s、

            表 1ꎮ 采用 RNAprep Pure Plant Plus Kit (Tiangen)      60 ℃ 15 s、72 ℃ 10 s)和 1 个熔解反应(94 ℃ 15
                                                ®                                              -ΔΔCt
            提 取 猕 猴 桃 总 RNAꎮ 以 TransScript         One ̄Step    s、60 ℃ 15 s、94 ℃ 15 s)ꎮ 通过 2        计算ꎬ获得
            gDNA Removal and cDNA Synthesis SuperMix           AcPAL 基因的相对表达量ꎮ

                                        表 1  实时荧光定量 PCR(qRT ̄PCR)分析引物
                              Table 1  Primers used for quantitative real ̄time PCR (qRT ̄PCR) analysis

                    基因名称                正向引物序列(5′→3′)                       反向引物序列(5′→3′)
                    Gene name           Forward primer sequence (5′→3′)     Reverse primer sequence (5′→3′)
                     AcPAL1             TGGTAATGGTAATGGTAATGGC              GCTGCCCTTCATCGACTC
                     AcPAL2             CAGTCAAGTGTTGTGAAATTTGTG            TTATAGCTGCTAATCGTGTTTGTG
                     AcPAL3             GATTGTTTGAAGGAGTGGAATG              TCTAGCACGTGGATCCTGTAAC
                     AcPAL4             GATTGTCTCAAGGAGTGGAATG              ACTTAAAGTCTTCTTCATTATTGGC

                     AcPAL5             GCTTCAGCTATTAAGAAATGTGTCA           ATTCCCAAATATTCCAGCATTC
                     AcPAL6             AAGTTGGTTGATCCATTGCTG               GGATTCACGTGAATTAATTCTGG
                     AcPAL7             CAGCTATTTGTGAAGGGAAATTG             TGTTGCATGTTATTGGTCTTTAGC
                      Actin             GTGCTCAGTGGTGGTTCAA                 GACGCTGTATTTCCTCTCAG


            1.7 苯丙氨酸解氨酶活性测定                                    为酸 性 蛋 白ꎻ 不 稳 定 系 数 为 29. 35 ( AcPAL7) ~

                 参照苯丙氨酸解氨酶( PAL) 试剂盒( PAL ̄1 ̄                   35.57(AcPAL4)ꎬ均低于 40ꎬ说明其均属于稳定蛋
            Yꎬ苏州 科 铭 生 物 技 术 有 限 公 司) 说 明 书ꎬ 依 据               白ꎻ总亲 水 性 值 在 - 0. 097 ( AcPAL6) 至 - 0. 174
            PAL 催化 L ̄苯丙氨酸生成的裂解产物( 反式肉桂                         (AcPAL5) 之 间ꎬ 说 明 AcPAL 蛋 白 均 具 亲 水 性ꎮ
            酸) 在 290 nm 波长处具有最大吸收峰的原理ꎬ通                        亚细胞定位预测结果显示 7 个 AcPAL 蛋白均定位
            过测定各样品在该波长下的吸光值ꎬ计算 PAL 酶                           于细胞质中ꎮ

            活性ꎮ                                                2.2 AcPAL 家族基因的染色体定位与共线性模式
                                                                   染色体定位结果如图 1 所示ꎬ7 个 AcPAL 基因
            2  结果与分析                                           不均匀分布于猕猴桃的 5 条染色体上ꎬ其中 LG8

                                                               和 LG18 染色体各含有 2 个成员ꎬLG3、LG26、LG28
            2.1 猕猴桃 AcPAL 家族基因的鉴定                              染色体各含有 1 个成员ꎮ 值得注意的是ꎬAcPAL4
                 经 HMMER 检索及 BLASTp 同源性分析ꎬ剔除                   和 AcPAL5 均定位在 LG18 染色体上且具有相同的
            结构域缺失及冗余序列后ꎬ从猕猴桃基因组中共                              转录方向ꎻ它们的基因间隔区仅跨越 3 637 bp 且
            鉴定出 7 条 AcPAL 基因ꎮ 根据其在染色体上的位                       该区域未发现其他功能基因ꎬ同时它们在核苷酸
            置顺序ꎬ依次命名为 AcPAL1-AcPAL7(表 2)ꎮ 理化                   和氨基酸水平的序列相似性分别高达 95.65% 和
            性质分析结果表明ꎬAcPAL 家族编码的蛋白长度均                          94.66%ꎬ表明 AcPAL4 和 AcPAL5 起源于串联重复
            大于 700 aaꎬ其中 AcPAL1 最短(706 aa)ꎬAcPAL7              事件ꎮ 此外ꎬ基因密度分析显示ꎬAcPAL 基因主要
            最 长 ( 722 aa )ꎻ 分 子 量 范 围 为 76 586. 57             分布于基因密度相对较高的基因组区域ꎮ
            (AcPAL2) ~ 77 824.86 Da( AcPAL7)ꎻ理论等电点                 种内共线性结果显示ꎬAcPAL 家族内存在 10
            为 5.92 ~ 6.17ꎬ均小于 7ꎬ表明所有 AcPAL 蛋白均                 对共线性基因对ꎬ 单个成员可与多个其他成员形
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