Page 37 - 《广西植物》2026年第9期
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9 期                 肖金妃等: 镰花黄堇在中国的分布确认及其系统发育位置解析                                          1 4 7 3

            精细解剖图、鉴别特征和分布信息ꎬ并基于叶绿体                             参数设置为“ ̄R 15  ̄k 21ꎬ45ꎬ65ꎬ85ꎬ105ꎬ127  ̄F
            基因组数据明确了其系统发育位置ꎮ                                   embplant_ pt”ꎮ 由 于 其 中 14 个 样 品 仅 组 装 至
                                                               Scaffold 水平ꎬ因此将每个样品的 Scaffold 序列以
            1  材料与方法                                           200 个“N”串联为单条序列后ꎬ与完整的叶绿体基
                                                               因组一并以已发表的皱波黄堇的叶绿体基因组序
            1.1 野外考察与物种鉴定                                      列 ( GenBank 登 录 号: ON152773 ) 为 参 考ꎬ 使 用

                 本研究团队分别于 2024 年 4 月和 2025 年 6                 Plastid Genome Annotator( PGA) ( Qu et al.ꎬ 2019)
            月前往西藏自治区错那市勒布沟开展了野外科学                              进行注释ꎮ 最后ꎬ在 Genious Prime( Kearse et al.ꎬ
            考察ꎬ采集了镰花黄堇的凭证标本ꎬ并将其新鲜叶                             2012)中对注释结果进行人工校正和调整ꎮ

            片置于硅胶中迅速干燥保存ꎬ用于后续分子实验ꎮ                             1.4 系统发育重建
            同时ꎬ本研究对植株整体形态及叶片、花冠和蒴果                                 基于 最 新 的 紫 堇 属 分 类 系 统 ( Chen et al.ꎬ
            等关键形态特征进行了细致解剖观察ꎬ并附上比                              2023)ꎬ本研究共选取 24 个物种、32 份样品开展系
            例尺进行拍照记录ꎮ                                          统发育分析ꎬ包括皱波黄堇组(6 种)、须弥黄堇组
                 在物种鉴定过程中ꎬ本研究主要参考了«西藏                          (C. sect. Chrysocapnos Wendelboꎬ3 种)、糙果紫堇组
            植物志»(吴征镒ꎬ1985)、«中国植物志» ( 吴征镒ꎬ                      [C. sect. Trachycarpae (Fedde) Feddeꎬ3 种]、卡惹拉
            1999)、Flora of China(Zhang et al.ꎬ 2008)ꎬ以及该       黄堇 组 ( C. sect. Inopinatae J. T. Chenꎬ T. Dengꎬ
            物种的原始文献( Longꎬ 1984) 和模式标本ꎬ对相                      Lidén & H. Sunꎬ 3 种 )、 类 烟 堇 组 ( C. sect.
            关形态特征进行了详细比较和核对ꎮ 使用 ImageJ                         Fumarioides Lidénꎬ 3 种)、 米 林 紫 堇 组 ( C. sect.
            软件(Abràmoff et al.ꎬ 2004) 对带比例尺的野外形                Lupinoides J. T. Chenꎬ T. Dengꎬ Lidén & H. Sunꎬ1
            态照片和标本进行测量ꎮ                                        种)、 南 黄 堇 组 ( C. sect. Davidianae C. Y. Wu &
            1.2 DNA 提取与测序                                      H. Chuangꎬ 3 种 ) 以 及 双 斑 黄 堇 组 ( C. sect.
                 采用改良的 CTAB 法( Doyle & Doyleꎬ 1987)            Bimaculatae J. T. Chenꎬ Lidénꎬ T. Deng & H. Sunꎬ2
            提取镰花黄堇的总 DNAꎬ并用 Qubit 荧光计( Qubit                   种)ꎮ 根据 Chen 等(2023)的研究结果ꎬ选取双斑黄
            Fluorometer)检测 DNA 的质量和浓度ꎮ 检测合格                    堇(C. bimaculata C. Y. Wu & T. Y. Shu) 和伞花黄
            后ꎬ使用 Covaris 超声波破碎仪进行 DNA 随机片段                     堇(C. corymbosa C. Y. Wu & T. Y. Shu) 作为外类
            化ꎬ 随 后 进 行 测 序 文 库 构 建ꎮ 文 库 质 量 采 用                群ꎮ 所有样品的数据来源见表 1ꎮ
            Agilent 5400 system 进行检测ꎬ并利用 qPCR 方法                   构 建 矩 阵 时ꎬ 先 使 用 脚 本 “ get _ annotated _
            准确测定文 库 的 有 效 浓 度ꎮ 最 终 在 DNBSEQ ̄T7                 regions_from_gb.py”(Zhang et al.ꎬ 2020) 提取叶绿
            平台(天津诺禾致源科技有限公司) 进行高通量测                            体基因组编码区ꎬ再选取 64 个编码序列用于后续
            序ꎬ获得约 10 Gb 的测序数据ꎮ                                 分析ꎮ 使用软件 MAFFT v7.526(Katoh & Standleyꎬ
            1.3 叶绿体基因组组装与注释                                    2013)进行序列比对后ꎬ再在 PhyloSuite v2(Zhao et
                 除镰花黄堇为本研究新测序数据以外ꎬ本研                           al.ꎬ 2025) 中利用 Gblocks( Talavera & Castresanaꎬ

            究 团 队 还 从 NCBI 数 据 库 ( https: / / www. ncbi.       2007)去除比对中的模糊区域ꎬ最后用 Concatenate
            nlm.nih.gov)下载了 5 个已发表的叶绿体基因组及                     Sequence 功能获得串联矩阵ꎮ
            26 个基因组浅层测序原始数据ꎮ 对新测序数据和                               系 统 发 育 树 采 用 最 大 似 然 法 ( maximum
            下载的原始数据进行叶绿体基因组的组装后ꎬ对                              likelihoodꎬML) 进 行 重 建ꎬ 分 析 软 件 为 RAxML ̄
            所有叶绿体基因组进行统一注释与基因提取ꎬ以                              HPC2 v. 8. 1. 11 ( Stamatakisꎬ 2014 )ꎬ bootstrap

            用于后续的系统发育分析ꎮ                                       iterations( ̄# |  ̄N)参数设置为 1 000ꎮ
                 首先ꎬ利用 Fastp v1.0.1(Chen et al.ꎬ 2018) 对
            27 个原始测序数据进行质量控制ꎬ去除接头序列                            2  结果与分析
            和低质量读段ꎬ获得高质量洁净数据( clean data)
            用于后续分析ꎮ 然后ꎬ采用 GetOrganelle v 1.7.7.1               2.1 镰花黄堇的形态描述
            (Jin et al.ꎬ 2020)进行叶绿体基因组的从头组装ꎬ                       镰花黄堇(新拟)(图 1 和图 2)
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