Page 49 - 《广西植物》2020年第3期
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3 期             姜舒等: 海南西海岸真红树内生放线菌多样性及其延缓衰老活性初筛                                            3 2 9

   响ꎬ以该区域 14 种真红树植物为研究对象ꎬ通过
                                                                   表 1  样品采集信息
   纯化培养技术分离菌株ꎬ利用菌株的 16S rRNA 基
                                                           Table 1  Information of collected samples
   因序列分析并鉴定真红树内生放线菌的多样性ꎬ丰
   富该海域真红树内生放线菌新物种ꎬ挖掘微生物的                             样品编号
                                                       Code of      植物名称       植物组织
   潜在药理活性ꎬ对海洋微生物资源的开发利用具有                              sample      Plant name  Plant tissue
   重要意义ꎮ
                                                        H1   桐花树               茎、叶、胚轴
                                                             Aegiceras corniculatum  Stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   1  材料与方法                                             H2   红海榄               花、茎、叶、胚轴、根
                                                             Rhizophora stylosa  Blossomꎬ stemꎬ leafꎬ
                                                                               hypocotylꎬ root
   1.1 材料和仪器                                            H3   榄李                茎、叶、胚轴
                                                             Lumnitzera racemosa  Stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   1.1.1 仪器和设备  SW ̄CJ ̄2F 洁净工作台ꎬHVE ̄5
                                                        H4   白骨壤               花、茎、叶、胚轴
   高压灭菌锅ꎬOLYMPUS SZX 16 体视镜ꎬB11 ̄BS ̄Ⅱ                         Avicennia marina  Blossomꎬ stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   电热恒温培养箱ꎮ                                             H5   桐花树               茎、叶、胚轴、根
                                                             Aegiceras corniculatum  Stemꎬ leafꎬ hypocotylꎬ root
   1.1.2 材料和试剂  大肠埃希菌(OP50)和野生型秀
                                                        H6   白骨壤               茎、叶、胚轴
                                                             Avicennia marina  Stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   丽隐杆线虫(N2) 均由广西科学院汪斌博士惠赠ꎮ
                                                        H7   红海榄               茎、叶、胚轴、根
   5%次氯酸钠购于杭州朗索医用消毒剂有限公司ꎻ
                                                             Rhizophora stylosa  Stemꎬ leafꎬ hypocotylꎬ root
   chelex ̄100 树脂、2×Easy Taq Supermix 购于美国 Bio ̄          H8   白骨壤               茎、叶
   Rad 公司ꎻPCR 引物(27Fꎬ 1492R)购于北京全式金                          Avicennia marina  Stemꎬ leaf
   生物技术有限公司ꎻ二甲基亚砜(DMSO) 等其他试                            H9   木果楝               茎、叶、胚轴、根
                                                             Xylocarpus granatum
                                                                               Stemꎬ leafꎬ hypocotylꎬ root
   剂均为分析纯ꎬ购于西陇科学股份有限公司ꎮ                                 H10  瓶花木               茎、胚轴
   1.2 方法                                                    Scyphiphora hydrophyllacea Stemꎬ hypocotylꎬ
                                                        H11  桐花树               茎、叶、胚轴
   1.2.1 样本来源与采集  14 种真红树植物 46 份植                            Aegiceras corniculatum  Stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   物组织于 2017 年 7 月采集于海南西海岸区域的红                          H12  红树                茎、叶、胚轴、根
                                                             Rhizophora apiculata  Stemꎬ leafꎬ hypocotylꎬ root
   树林ꎬ具体信息见表 1ꎮ H1 ̄H7 真红树植物的地理
                                                        H13  木榄                茎、叶、胚轴
   位置为109°59′37″ E、19°55′07″ NꎬH8 ̄H14 的地理                    Bruguiera gymnorrhiza  Stemꎬ leafꎬ hypocotyl
   位置为 109°31′50″ E、19°51′26″ Nꎮ 菌株载体用                  H14  卤蕨                茎、叶
                                                             Acrostichum aureum  Stemꎬ leaf
   无菌水冲洗 3 次后立即装入密封采样袋ꎬ置于采
   样冰盒中ꎬ24 h 内完成菌株分离ꎮ
   1.2.2 菌 株 的 分 离 纯 化 与 保 藏   参 考 李 家 怡 等           1.2.3 菌株的 16S rRNA 基因序列的系统发育学分
   (2018)的样品处理方法ꎬ用 5%次氯酸钠溶液浸泡                        析  系统发育学分析基因组 DNA 的提取和 PCR
   8 minꎬ对红树植物各个组织样品进行表面消毒ꎬ无                         梯度扩增参照 Walsh et al.(1991)的方法进行ꎮ 所
   菌水冲洗残余液体ꎻ75%的酒精溶液浸泡 5 minꎬ无                       有菌株均在 ISP2 培养基上三区划线纯化ꎬ根据菌
   菌水冲洗至无酒精味ꎮ 分别取表面消毒后的植物                            落形态特征进行初步排重ꎬ不同形态的菌株利用
   材料(约 2 g) 充分研磨ꎬ吸取 2 mL 无菌水与样品                     Chelex ̄100 树脂法提取菌株 DNAꎬ16S rRNA 基因
   充分混匀ꎬ该浓度液体为样品原液ꎬ取 1 mL 原液                         扩增和序列分析ꎮ PCR 产物用 1%琼脂糖凝胶电
   用无菌水稀释到 10 于 4 ℃ 冰箱暂存ꎮ 取 10 组                     泳检测ꎬ利用 Bio ̄RAD 凝胶成像仪观察电泳条带ꎬ
                      ̄4
                                               ̄4
   织悬 液 0. 2 mLꎬ 分 别 接 种 于 AGG、 M4、 M5、 M7、          检验合格后委托上海美吉生物医药技术有限公司
   M9、M10、P7、P3、M11 9 种分离培养基( 表 2) 中ꎬ                广州分公司进行测序ꎮ 测序结果经 DNA Star 软件
   于 28 ℃ 恒温培养箱培养 2 ~ 8 周ꎻ通过颜色、大小、                   整理ꎬ利用数据库 EzBioCloud( https: / / www. ezbio ̄
   形态等指标观察ꎬ挑选不同的菌落在 ISP2 纯化培                         cloud.net/ ) ( Kim et al.ꎬ2009) 进 行 在 线 比 对ꎻ 对
   养基上进行三区划线纯化ꎬ直至得到单一纯净的                             16S rRNA 基因序列进行相似性比对搜索ꎬ从中选
   菌落ꎬ并记录菌落数及菌落的形态特征ꎮ 纯化好的                           取相似 性 较 高 且 是 有 效 描 述 的 典 型 菌 株 的 16S

   菌株制成 20%(V/ V)甘油管保藏于-80 ℃ꎮ                        rRNA 基因序列作为参比对象ꎮ
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