Page 18 - 《广西植物》2025年第10期
P. 18
1 7 4 8 广 西 植 物 45 卷
药可持续利用研究重点实验室ꎮ 醇-水ꎬ70 ∶ 30 → 90 ∶ 10ꎬ V / V) 及 半 制 备 HPLC
1.2 主要仪器、设备和试剂 (YMC ̄ODS 柱ꎬ 60% 乙腈 - 水ꎬV / Vꎬλ = 220 / 254
Bruker AV ̄600 MHz、AV ̄400 MHz 超导核磁共 nm)分离得到化合物 5 (35.0 mg)ꎮ Fr.2 ̄4 (40.0
振波谱仪(德国 Bruker 公司)ꎻAgilent 1290 UPLC / g)经 RP ̄18 柱色谱ꎬ以甲醇-水(50 ∶ 50→90 ∶ 10ꎬ
6545 Q ̄TOF 质谱仪(安捷伦科技有限公司)ꎻYMC ̄ V / V)梯度洗脱后ꎬ通过 RP ̄18 柱色谱( 甲醇 -水ꎬ
ODS 柱(填料粒径 5 μmꎬ直径 10 mmꎬ长 250 mmꎬ 60 ∶ 30 → 90 ∶ 10ꎬ V / V) 及 半 制 备 HPLC ( YMC ̄
北京赛谱锐思科技有限公司)ꎻ LC ̄52 半制备型高 ODS 柱ꎬ40% 乙腈-水ꎬV / Vꎬλ = 220 / 254 nm) 和
效液相色 谱 仪 ( 北 京 赛 普 锐 斯 科 技 有 限 公 司)ꎻ 反复重 结 晶ꎬ 分 离 得 到 化 合 物 1 ( 30. 0 mg)、 2
MCI CHP ̄20P GEL(日本三菱化学公司)ꎻSephadex (100.0 mg)、3 (70.0 mg)、4 (100.0 mg)、6 (10.0
LH ̄20(Pharmacia 公司)ꎻ柱层析硅胶 G(200 ~ 300 mg)、10 (100.0 mg)ꎮ
目、60 ~ 80 目)和薄层层析硅胶 H( 青岛海洋化工 1.3.2 细胞毒活性测试 ( CCK ̄8 法) 本实验选用
厂)ꎻ色谱纯乙腈( 德国默克公司)ꎻ色谱纯 甲 酸 人 神 经 母 细 胞 瘤 细 胞 SH ̄SY5Y、 人 胰 腺 癌 细 胞
(上海阿拉丁生化科技股份有限公司)ꎻ水为超纯 SW1990、小鼠乳腺癌细胞 4T1ꎮ 细胞置于 DMEM
 ̄1
水ꎻ石油醚、乙酸乙酯、二氯甲烷、甲醇等有机试剂 培养基并加入双抗 (青霉素 100 UmL 和链霉素
为国产 AR 级试剂( 云南利妍科技有限公司)ꎻ低 100 μgmL )ꎬ置于 37 ℃ 、5%CO 培养箱中培养
 ̄1
2
温冷却循环泵( 巩义市予华仪器有限责任公司)ꎻ 至细胞覆盖率达 90%以上时传代ꎬ生长状态良好
氘代试剂(北京伊诺凯有限公司)ꎻ旋转蒸发仪( 东 的细胞用于实验研究ꎮ
京理化器械株式会社)ꎻELX ̄800 酶标仪( 美国宝 取 96 孔细胞培养板ꎬ每孔加入浓度为每毫升
3
特公司)ꎻZHJH ̄C1109C 超净工作台( 上海智诚分 5 × 10 个细胞的悬液 100 μLꎬ37 ℃ 、5%CO 培养
2
析仪器制造有限公司)ꎻHHB11360 ̄S CO 培养箱 箱中贴壁培养 24 h 后ꎬ吸弃原培养液ꎬ加入质量浓
2
(上海跃进医疗器械厂)ꎻCCK ̄8 试剂盒 ( 上海泰 度分别为 100、50、25 μmolL 的受试药物(DMSO
 ̄1
溶解)ꎬ每个质量浓度 3 个复孔ꎬ空白组加入等量
坦科技股份有限公司)ꎻ人神经母细胞瘤细胞 SH ̄
SY5Y、人胰 腺 癌 细 胞 SW1990、 小 鼠 乳 腺 癌 细 胞 含 0.1%DMSO 的培养基ꎬ以紫杉醇为阳性对照ꎬ37
4T1(武汉普诺赛生命科技有限公司)ꎮ ℃ 、5%CO 培养箱中培养 24 hꎮ 取出细胞培养板ꎬ
2
1.3 实验方法 每孔加入含 10%CCK ̄8 的培养基ꎬ继续培养 2 hꎮ
1.3.1 提取与分离 对干燥的昆明山海棠根茎 20 于酶联免疫检测仪 450 nm 处测量各孔的吸光度
kg 进行粉碎后以 60 L 90%乙醇室温浸泡过夜ꎬ然 (A)ꎬ计算各组细胞 存 活 率:细 胞 存 活 率 (%) =
后回流提取 2 hꎬ共 3 次ꎬ合并 3 次提取液浓缩至无 (A 样品组 - A 空白对照组 ) / ( A 溶剂对照组 - A 空白对照组 ) × 100ꎮ
乙醇味ꎬ以等体积水分散ꎬ用 2 倍量乙酸乙酯萃 试验重复 3 次ꎮ
取ꎬ共 3 次ꎬ合并乙酸乙酯提取物ꎬ得到乙酸乙酯
2 结果与分析
部位ꎮ 乙酸 乙 酯 部 位 500. 0 gꎬ 硅 胶 柱 层 析 ( 5. 0
kgꎬ23 cm × 75 cm)ꎬ以石油醚-乙酸乙酯(98 ∶ 2、
95 ∶ 5、90 ∶ 10、80 ∶ 20ꎬ V / V) 洗脱ꎬ获得 4 个流分 2.1 化合物结构鉴定
Fr.1-Fr.4ꎬ将各流分进行 LC ̄MS 分析ꎬ发现流分 从昆明山海棠乙酸乙酯萃取物中得到的 10 个
Fr.2 主要成分为二萜ꎬ因此选择这部分作为研究 松香烷 型 二 萜 类 化 合 物ꎬ 分 别 鉴 定 为 雷 酚 内 酯
对象ꎮ Fr.2 经 MCI 柱色谱ꎬ以甲醇-水 (70 ∶ 30→ (1)、 异 雷 酚 新 内 酯 ( 2 )、 triptobenzene I ( 3 )、
100 ∶ 0ꎬV/ V) 梯度洗脱后ꎬ得到流分 Fr.2 ̄1-Fr.2 ̄4ꎮ triptotin A ( 4 )、 triptotin B ( 5 )、 triptobenzene N
Fr.2 ̄2 ( 25. 0 g) 经 硅 胶 柱 色 谱ꎬ 以 氯 仿 - 丙 酮 ( 6 )、 triptobenzene M ( 7 )、 wilforol F ( 8 )、
triptobenzene A (9)、对醌 21 (10)ꎬ化学结构如图
(90 ∶ 10、80 ∶ 20ꎬV / V) 梯度洗脱后ꎬ通过 RP ̄18
柱色 谱 ( 70% 甲 醇 - 水ꎬ V / V) 和 半 制 备 HPLC 1 所示ꎮ
(YMC ̄ODS 柱ꎬ 50% 乙 腈 - 水ꎬ V / Vꎬ λ = 220 / 254 化 合 物 1 白 色 粉 末ꎬ HR ̄ESI ̄MS m / z:
- 20.0
nm)ꎬ分离得到化合物 7 (7.0 mg)、8 (20.0 mg)、9 311.167 2 [M-H] ꎮ 分子式为 C H O ꎮ [α] D +
24
3
20
1
(15.0 mg)ꎮ Fr.2 ̄3 (309.0 g)经 RP ̄18 柱色谱(甲 35.00 ( c = 0.29ꎬCHCl ) ꎮ H ̄NMR ( 600 MHzꎬ
3

