Page 84 - 《广西植物》2026年第5期
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8 1 6                                  广  西  植  物                                         46 卷
            碱解氮 45 mgkg ꎬ速效磷 18 mgkg ꎬ速效钾                  1.4 AMF 接种效率测定
                                                  ̄1
                               ̄1
                        ̄1                                          AMF 定殖率测定采用酸性品红染色法ꎬ取各
            120 mgkg ꎮ
            1.2 方法                                             处理玉米植株的新鲜根段 1 ~ 2 cmꎬ经 KOH 透明、
                 实验在辽宁省丹东市辽东学院作物育种试验                           HCl 酸化后染色ꎬ在光学显微镜下观察ꎬ计算定殖
            基地人工气候室中进行ꎬ环境条件设置如下:白天                             率(定殖率 = 定殖根段数 / 总根段数×100%)ꎻ土壤
            温度( 28 ± 2)℃ ꎬ夜 间 温 度 ( 22 ± 2)℃ ꎬ 光 照 强 度         AMF 孢子密度测定采用湿筛倾注-蔗糖离心法ꎬ称
                                                                                                      ̄3
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            400 μmolm s ꎬ光照时长 14 hd ꎬ相对湿度                取 100 g 风干土样分级过滤ꎬ用 1.2 gcm 蔗糖溶
            60% ~ 70%ꎮ 采用盆栽控制实验ꎬ共设置 4 个处理                      液离心分离孢子ꎬ在体视显微镜下计数ꎮ
            组(6 次生物学重复):对照组( CK)、AMF 组、150                     1.5 抗氧化系统指标测定
                                                                                                          ̄1
                      ̄1                                   ̄1        取新鲜叶片 0.5 gꎬ加入预冷的 50 mmolL 磷
            mmol L   NaCl 胁 迫 组、 AMF + 150 mmol  L
            NaCl 胁迫组(NaCl+AMF)ꎮ                                酸缓冲液( pH 7.8)ꎬ在冰浴条件下研磨成匀浆ꎬ4
                 每盆装土 2 kgꎬ将 AMF 接种剂按每盆 50 g 的                 ℃、12 000 rmin 离心 20 minꎬ取上清液用于抗氧
                                                                               ̄1
            量均匀混入土壤ꎬ对照组加入等量灭菌后的 AMF                            化酶活性和丙二醛(malondialdehydeꎬMDA) 含量测
            接种剂ꎮ 每盆播种 3 粒ꎬ待玉米幼苗长至三叶一                           定ꎮ 超氧化物歧化酶(superoxide dismutaseꎬSOD)活
            心期时(播种后 15 d)ꎬ间苗保留 1 株长势一致的                        性采用氮蓝四唑(nitroblue tetrazoliumꎬNBT) 光化还
            幼苗后开始处理ꎬ通过浇灌 150 mmolL NaCl 溶                    原法测定ꎻ过氧化物酶(peroxidaseꎬPOD) 活性采用
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            液(以 0.5 倍 Hoagland 营养液配制) 进行ꎬ每周浇                   愈创木酚法测定ꎻ过氧化氢酶( catalaseꎬCAT) 活性
            灌 2 次(以基质表面开始出现干燥为准)ꎬ每次每                           采用紫外吸收法测定ꎻMDA 含量采用硫代巴比妥酸
            盆浇灌 300 mL(基质渗滤液约 15%)ꎬ对照组浇灌                       (thiobarbituric acidꎬTBA)法测定ꎮ
            等量 0.5 倍 Hoagland 营养液ꎬ共处理 4 周ꎬ直至玉                  1.6 光合作用参数测定
            米拔节期( 播种后 45 d) 结束ꎮ 试验期间使用 EC                          使用便携式光合仪( LI ̄6400ꎬLI ̄CORꎬ美国)
            测定仪( B173ꎬ霍里巴公司ꎬ 日本) 测定基质滤出                        于上 午 9: 00—11: 00 测 定 叶 片 的 净 光 合 速 率
            液电导率( electrical conductivityꎬ ECꎬdSm ) 以        (P )、气孔导度(G )、胞间 CO 浓度(C )ꎮ 测定时
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            监测盐胁迫水平的稳定性(图 1)ꎮ                                  选取植株顶部完全展开叶ꎬ设定光照强度为 1 200
                                                                        ̄2
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                                                               μmolm s ꎬCO 浓度为 400 μmolmol ꎬ叶室
                                                                                2
                                                               温度为 28 ℃ ꎮ
                                                               1.7 离子稳态指标测定
                                                                   将烘干后的植株叶片样品研磨成细粉ꎬ称取 0.2
                                                               g 样品置于消煮管中ꎬ加入 5 mL 浓 HNO 和 1 mL
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                                                               H O ꎬ在电热板上进行消煮至溶液澄清透明ꎮ 消煮
                                                                2  2
                                                               液冷却后ꎬ用去离子水定容至 50 mLꎬ采用火焰原子
                                                               吸收分光光度计 ( AA ̄6880ꎬ Shimadzuꎬ 日本) 测定
                                                                 +    +                     +  +
                                                               Na 和 K 浓度ꎬ并计算叶片中 Na / K 比值ꎮ
                                                               1.8 基因表达分析
                 图 1  实验期间基质滤出液电导率的变化                              取新鲜叶片 0. 2 gꎬ采用 TRIzol 试 剂 提 取 总
                                                                                                 TM
              Fig. 1  Change of the leachate electrical conductivity  RNAꎬ通过逆转录试剂盒( PrimeScript    RT reagent
                        during the experimental period         Kit with gDNA EraserꎬTaKaRaꎬ日本) 合成 cDNAꎮ
                                                               利用实时荧光定量 PCR( qRT ̄PCR) 检测 ZmNHX1
            1.3 植株生长指标测定                                       和 ZmHAK1 基因的表达水平ꎬ以玉米 β ̄actin 基因
                 实验处理结束后ꎬ每个处理随机选取 6 株玉米                        为内参基因ꎮ qRT ̄PCR 反应体系(20 μL)如下:10
                                                                                    TM
            苗ꎬ测定株高(从基部至植株顶端的垂直高度)、地                            μL SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(TaKaRa)ꎬ0.8 μL 上、
                                                                                     ̄1
            径(茎基部直径)ꎬ之后将植株地上部分收集ꎬ于                             下游引物( 10 μmolL )ꎬ2 μL cDNA 模 板ꎬ6. 4
            105 ℃ 杀青 30 minꎬ75 ℃ 烘干至恒重ꎬ称取干重ꎮ                   μL ddH Oꎮ 反应程序如下:95 ℃ 预变性 30 sꎻ95
                                                                      2
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