Page 122 - 《广西植物》2020年第9期
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9 期                金秋珠等: 产壳聚糖酶内生真菌的筛选、鉴定及酶活力初步研究                                          1 3 3 7


                                   表 2  活性菌株菌落形态及生长直径
                      Table 2  Colonies morphology and growth diameter of the active strains

                                             菌落特征
     培养基                                 Colony characteristics                            直径
     Culture                                                                             Diameter
     medium              菌落正面形态                               菌落背面形态                      (cm)
                    Frontal morphology of colonies      Background morphology of colonies
      PDA    菌落表面呈白色ꎬ质地为短绒毛状ꎬ少量同心环ꎬ              圆心周围颜色较深ꎬ菌落外围颜色变为黄绿色ꎬ具                    4.29
             边缘整齐                                有过渡同心环带
             White colony surfaceꎬ short villous textureꎬ a few con ̄  The color around the center is darkerꎬ and the sur ̄
             centric ringsꎬ neat edges           rounding color of the colony turns to yellow ̄greenꎬ
                                                 with a transition concentric ring
      CA     菌落表面呈白色ꎬ质地为短绒毛状ꎬ边缘整齐                白色至淡黄色                                    4.00
             White colony surfaceꎬ short villous textureꎬ neat edges  White to light yellow
      CYA    菌落表面呈白色ꎬ质地为短绒毛状ꎬ有大量放射状              黄褐色ꎬ有少量同心环ꎬ环纹颜色较深ꎬ有大量放                    3.94
             沟纹ꎬ边缘整齐                             射状皱纹
             White colony surfaceꎬ short villous textureꎬ a large  Yellow ̄brownꎬ with a few dark concentric rings and a
             number of radial groovesꎬ neat edges  large number of radial wrinkles
     G25N    菌落表面呈白色ꎬ质地为短绒毛状ꎬ边缘整齐                黄绿色ꎬ菌落边缘呈白色                               2.69
             White colony surfaceꎬ short villous textureꎬ neat edges  Yellow ̄green colony with white edge

     注: 以上为菌株 Stdif9 ̄4 在不同培养基上培养 7 d 的菌落形态图ꎮ
     Note: The above is the colony morphology of strain Stdif9 ̄4 culturing on different media for 7 d.


                                                     推测可能因为在发酵初期ꎬ培养基内的营养物质
                                                     充裕ꎬ菌体大量繁殖ꎬ产生大量的壳聚糖酶ꎬ后期
                                                     由于营养物质的减少及菌体进入衰亡期ꎬ壳聚糖
                                                     的产生也随之减少( 熊妍妍等ꎬ2018)ꎮ 本文仅研
                                                     究了发酵时间对壳聚糖酶活力的影响ꎬ接种量、培
                                                     养基各营养成分( 如碳源、氮源等) 以及培养条件
                                                     (如温度、pH 等) 等因素也均可影响壳聚糖酶活
                                                     力ꎬ后期可利用单因素实验结合正交实验或响应

                                                     面分析等进行综合分析ꎬ以确定最有效促进产壳
                                                     聚糖酶活力提高的条件ꎮ
                                                         大部分壳聚糖酶活性均 可 受 金 属 离 子 的 影
                                                     响ꎮ 本研究使用 8 种氯盐分别提供了 8 种金属离
                                                                              2+
                                                                         2+
                                                               +
                                                                                   2+
                                                           +
                                                                                        2+
                                                                   2+
                                                                                              3+
       图 2  内生真菌 Stdif9 ̄4 在 G25N 培养基上                子(Na 、K 、Ca 、Mn 、Zn 、Cd 、Ba 及 Fe ) 和
                培养 30 d 显微形态图                        AgNO 提供 Ag ꎬ考察不同金属离子对酶活力的影
                                                                   +
                                                          3
       Fig. 2  Microscopic morphology of strain Stdif9 ̄4  响ꎮ 其中ꎬMn 和 Ca 对 Stdif9 ̄4 壳聚糖酶活力具
                                                                  2+
                                                                        2+
            culturing on G25N medium for 30 d
                                                     有明显的激活作用ꎮ 相似的ꎬ单秋实(2015) 研究
                                                     发现 金 属 离 子 Mn 、 Ca 对 来 源 于 土 壤 的 青 霉
                                                                            2+
                                                                       2+
   cillium sp. Stdif9 ̄4 产壳聚糖酶活力在前 72 h 均较            (Penicillium sp. QS7)壳聚糖酶活力也具有促进作
   低ꎬ72 h 后迅速增加ꎬ并在 96 h 时达到最大值ꎬ随                     用ꎻ卓少玲(2012) 也发现 Ca 对来源于土壤的青
                                                                                2+
   后逐渐降低ꎮ 这与张翔等(2018)、张子瑞(2016)                      霉(Penicillium sp. M ̄2) 壳聚糖酶活力具有促进作
   报道的结果相似ꎮ 与之相应的ꎬ王钦宏和蔡静平                            用ꎮ Mn 和 Ca 对大多数微生物来源的壳聚糖酶
                                                            2+
                                                                   2+
   (2000)发现产酶活力最高时ꎬ培养液中活菌数也                          活性具有激活作用( 曾嘉ꎬ2002ꎻ郝日光ꎬ2005ꎻ段
                                                                  2+               +   2+   2+   3+
   达到了最高水平ꎬ并确定 3 d 为适宜的收获时间ꎮ                         妍ꎬ2006)ꎮ Ba 和重金属离子 Ag 、Zn 、Cd 、Fe
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