Page 163 - 《广西植物》2024年第2期
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2 期              周锦燕等: 刺五加新品种‘紫加 1 号’多糖分离纯化及抗氧化活性分析                                         3 6 5

                                  TM         TM                    式中: A 为纯水代替样品的吸光度ꎻ A 为加入
                 色 谱 条 件: Dionex     CarboPac   PA20 ( 150
                                                                          1                          2
            mm × 3.0 mmꎬ 10 μm) 阴离子色谱柱ꎻ进样量:5                   样品溶液的吸光度ꎻ A 为邻苯三酚溶液被纯水代
                                                                                   3
            μLꎻ流动相 A 为 0.1 molL NaOHꎬ流动相 B 为                 替的吸光度ꎮ
                                        ̄1
                        ̄1                  ̄1                       (3)DPPH 清除能力测定:采用 DPPH 法对多
            0.1 molL NaOHꎻ0.2 molL NaAcꎻ流速:0.5
                     ̄1
            mLmin ꎻ柱温:30 ℃ ꎮ                                 糖的体外抗氧化活性进行测定ꎬ当抗氧化剂存在
            1.3.6 抗氧化活性测定  (1) OH清除能力测定:                     时ꎬDPPH 溶液由深紫色变为淡黄色ꎬ在 517 nm 下
            采用 水 杨 酸 法 测 定 多 糖 对 OH 清 除 能 力ꎬ 根 据             吸光度变低ꎬ吸光度的变化与接受电子数量成定
            Fenton 反应产生的OH与水杨酸反应ꎬ在 510 nm                    量关系ꎬ可对抗氧化能力进行分析ꎮ 参考王铖博
            处生成有色物质ꎬ当抗氧化剂存在时有色物质相应                             等(2019)的方法ꎬ并稍加修改ꎮ 称取多糖粉末ꎬ溶
            减少ꎬ可通过吸光度的大小来判断清除OH的能                            于适量纯水中ꎬ配置不同质量浓度(0.1、0.3、0.5、
            力ꎮ 参考葛智超等(2021)的方法ꎬ稍加修改ꎮ 称取                        0.7、0.9、1.0 mgmL ) 的溶液ꎬ分别吸取 2 mL 于
                                                                                   ̄1
                                                                                           ̄1
            多糖粉末ꎬ溶于适量纯水ꎬ配制不同质量浓度 (0.1、                         试管中ꎬ加入 2 mL 2 mmolL 的 DPPH-无水乙醇
                                       ̄1
            0.3、0.5、0.7、0.9、1.0 mgmL )的溶液ꎬ分别吸取 2             溶液ꎬ25 ℃ 避光反应 30 minꎬ在 517 nm 处测定吸
            mL 溶液于试管中ꎬ加入 9 mmolL 的硫酸亚铁溶                      光度ꎮ 以 Vc 溶液为阳性对照、纯水为空白对照ꎬ
                                             ̄1
                             ̄1
            液和 8.8 mmolL 的过氧化氢溶液(3%ꎬV/ V)各 1                 重复 3 次ꎮ
            mLꎬ摇匀后加入 1 mL 9 mmolL 的水杨酸-乙醇溶                       对 DPPH 的清除活性:
                                          ̄1
            液ꎬ将混合溶液于 37 ℃下反应 1.0 hꎬ在波长 510 nm                                      A -A  2
                                                                                    1
            处测定吸光度ꎬ以纯水和维生素 C(Vc)溶液分别为                              清除率(%)= (1-       A   ) × 100ꎮ
                                                                                      0
            空白对照和阳性对照ꎬ重复 3 次ꎮ                                      式中: A 为纯水代替样品的吸光度ꎻ A 为加入
                                                                          0                          1
                 对OH的清除活性:                                   样品溶液的吸光度ꎻ A 为 DPPH-无水乙醇溶液被
                                                                                   2
                                 A -A                          纯水代替的吸光度ꎮ
                 清除率(%)= (1-      2  3  ) × 100ꎮ
                                   A                           1.4 数据处理
                                    1
                 式中: A 为纯水代替样品的吸光度ꎻ A 为加入                          使用 Excel 2010 软件绘图以及 SPSS 21.0 软
                        1                          2
            样品溶液的吸光度ꎻ A 为不加过氧化氢溶液的吸
                                 3                             件进行方差分析ꎮ
            光度ꎮ
                 (2)O 清除能力测定:采用邻苯三酚自氧                        2  结果与分析
                       -
                      2
            化法测定多糖对O 的清除能力ꎬ邻苯三酚在碱
                              -
                             2
            性条件下迅速自氧化生成O ꎬ加入抗氧化剂会                            2.1 多糖提取和含量测定
                                       -
                                      2
            抑制自氧化速度ꎬ并由绿色变为黄色ꎬ在 325 nm                              取‘紫加 1 号’样品 300 g 经热水煮提过滤、醇
            下通过测吸光度的大小来判断抗氧化活性ꎮ 参考                             沉、AB ̄8 大孔吸附树脂除杂脱色ꎬ浓缩干燥后得到
            杨洋等(2018) 的方法ꎬ并稍加修改ꎮ 称取多糖粉                         粗多糖粉末 59.19 gꎬ得率为 19.73%ꎬ多糖含量为
            末ꎬ溶于适量纯水ꎬ配制不同质量浓度(0.1、0.3、                         (8.41±0.09)%ꎮ
                                     ̄1
            0.5、0.7、0.9、1.0 mgmL ) 的溶液ꎬ分别吸取 2.0              2.2 用 DEAE ̄Cellulose 52 制备柱分离多糖
                                                   ̄1
            mL 于试管中ꎬ加入 4. 5 mL 50 mmolL 的 Tris ̄                  如图 1 所示ꎬASPS 在 DEAE-纤维素柱上的线
            HCl 缓冲液(pH 8.2)ꎬ在 25 ℃ 条件下反应 20 minꎬ               性洗脱中主要分离出 4 个峰ꎬ分别对应超纯水、0.3
                                    ̄1                                 ̄1                 ̄1                    ̄1
            加入 0.5 mL 25 mmolL 的邻苯三酚溶液ꎬ反应 5                  molL NaCl、0.6 molL NaCl 和 0.8 molL
            min 后加入 1 mL 10 mmolL 的 HCl 溶液终止反                NaCl 溶液ꎮ 依次用 4 L 上述洗脱液分离 ASPSꎬ洗
                                        ̄1
            应ꎬ于 325 nm 处测定吸光度ꎮ 以 Vc 溶液作阳性                      脱液经减压浓缩、透析、冷冻干燥后得到 4 个组
            对照ꎬ10 mmol L     ̄1  HCl 溶 液 作 空 白 对 照ꎬ 重 复       分ꎬ命名为 ASPA ̄1、ASPA ̄2、ASPA ̄3 和 ASPNꎬ得
            3 次ꎮ                                               率分别为 7.41%、4.87%、4.07%和 3.29%ꎮ
                     -
                 对O 的清除活性:                                   2.3 多糖的 Sephadex G ̄100 过滤层析结果
                    2
                                 A -A                              上述 4 个组分经 Sephadex G ̄100 凝胶柱纯化
                 清除率(%)= (1-      2  3  ) × 100ꎮ
                                   A                           结果如图 2 所示ꎬ 经凝胶柱纯化后的多糖为单一
                                    1
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