Page 112 - 《广西植物》2025年第8期
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1 4 7 8                                广  西  植  物                                         45 卷
            悬细胞核ꎮ
            1.3 细胞核提取质量检验                                      2  结果与分析
            1.3.1 流式细胞仪分析  取 1.2.2 中使用 6 种提取
            液提取 0.5 g PaVⅢ细胞系 PEM 重悬的细胞核ꎬ经                     2.1 欧洲云杉胚性细胞系形态观察
            50 μgmL 碘化丙啶( propidium iodideꎬPI) 孵育                欧洲云杉 PEM 为半透明多细胞组织( 图 1:
                        ̄1
            15 minꎬPBS 缓冲液清洗ꎬ再使用流式细胞仪( BD                      A)ꎬ随增殖时间延长ꎬ细胞组织开始出现黄褐色ꎮ
            FACScansꎬ德国) 上机检测经 PI 染色的颗粒ꎮ 采                     光学显微镜下可以观测到欧洲云杉 PEM 中主要
            用 488 nm 荧光强度激发ꎬ580 nm 荧光强度开始检                     包含两类形态完全不同的细胞( 图 1:BꎬC):小而
            测ꎬ610 nm 的荧光强度来确定 DNA 分布ꎬ以检测                       细胞质致密的细胞通常称为分生细胞( meristem
            细胞核数量与质量ꎮ 提取得到细胞核数量多、细                             cell)ꎬ大而高度液泡化的细胞通常称为液泡细胞

            胞碎片少的提取液为最优提取液ꎮ                                    (vesiculated cell)ꎮ 大部分胚性细胞不具有明显的
                 为检验最优提取液对不同基因型细胞系的适                           组织形态结构( 图 1:B)ꎬ但也可以观察到少量的
            用性ꎬ取 2 g PaVⅢ、PI3 和 PI5 细胞系的 PEMꎬ使                 早期体胚样结构(图 1:C)ꎮ
            用最优提取液进行提核ꎬ上流式细胞仪上机检测ꎬ                             2.2 不同细胞核提取液的效果比较
            每个细胞系重复 3 次ꎮ                                           使 用 LB01、 Ottos、 Galbraiths、 GPB、 WPB 和
            1.3. 2 数 据 分 析   使 用 FlowJo   TM  v10. 3 ( BD Life  TrisMgCl 6 种细胞核提取液分别处理 0.5 g 欧
                                                                         2
            Sciences)进行流式细胞仪分析ꎮ 选定前向散射角                        洲云杉 PEMꎬ并使用流式细胞仪分析 6 种细胞核
            信号(FSC) < 492 000ꎬ 侧 向 散 射 角 信 号 ( SSC) <          提取 液 的 提 取 效 率ꎮ 结 果 ( 图 2) 发 现ꎬ PEM 经
            560 000内的荧光信号为总的参与分析的荧光信                           LB01 提取液提取ꎬ得到细胞核数量最多ꎬ参与分
            号 P1 绘制散点图ꎮ 根据荧光信号光电转换形成                           析的细胞核数量达 6 169 个ꎻOttos 提取液次之ꎬ为
            的电脉冲信号ꎬ圈画出荧光信号聚集区域 P2ꎬ即为                           5 007 个ꎻWPB 和 TrisMgCl 提取液提取的细胞
                                                                                          2
            参与分析信号(Pfosser et al.ꎬ 1995ꎻ Loureiro et al.ꎬ      核数量最少ꎬ分别为 1 290 个和 1 327 个ꎻGPB 和
            2007)ꎮ 根据 DNA 分布最大峰值前 P3 为细胞核                      Galbraiths 的提取效率中等ꎬ分别获得 3 670 个和
            碎片ꎬ最大峰值至第二峰值 P4 为处于细胞周期                            3 245个细胞核ꎮ GPB 提取液产生了最多的细胞
            G0 / G1 到 G2 / M 期 的 细 胞 核 ( Dolezel et al.ꎬ       核碎片ꎬ流式细胞仪检测获得的完整细胞核不足
            2007)ꎬ计算 G0 / G1 和 G2 / M 的细胞核数量及变异                总细胞核的 50%ꎻ其他 5 种提取液获得的完整细
            系数ꎮ 每组提取液运行参数设置一致ꎬ比较分析                             胞核占比为 65% ~ 75%ꎮ 综合考虑细胞核提取效
            各种细胞核提取液提取获得的细胞核数量和碎片                              率和细胞核的完整性ꎬLB01 提取液在保持细胞核
            含量ꎬ产生更多单个细胞核和较少细胞核碎片的                              完整性的基础上具有最高的细胞核提取效率ꎮ 此
            提取液为最优提取液ꎮ 使用 GraphPad Prism 8.02                  外ꎬ比较 6 种提取液 G0 / G1 和 G2 / M 的细胞核数
            单因素方差分析欧洲云杉 PEM 细胞核效率基因                            量及其变异系数ꎬ相同质量欧洲云杉 PEM 经 LB01

            型间差异ꎮ                                              提取液提取到 G0 / G1、G2 / M 的细胞核数量较多ꎬ
            1.4 细胞核膜完整性检测                                      CV 分别为 5.0%和 4.4%ꎬ均为 6 种提取液中最低
                 处于增殖阶段的欧洲云杉 PaVⅢ细胞系使用                         (表 1)ꎮ 为验证 LB01 提取液提取欧洲云杉胚性
            体视显微镜(LEICA S6Eꎬ德国) 观测ꎬPEM 在液体                     细胞系的重复性及对不同基因型细胞系的适用
            培养基的形态使用光学显微镜( Olympus BX51ꎬ日                      性ꎬ使用 LB01 提取液提取 PaVⅢ、PI5 和 PI3 3 条

            本)观测ꎮ PEM 取经最优提取液进行细胞核提取ꎬ                          不同 PEM 的细胞核ꎮ 基因型间 PEM 细胞核的提
            重悬于 PBS(北京酷来搏科技有限公司ꎬ中国)ꎬ使                          取效率及细胞碎片的占比之间无显著性差异( 图
            用 DAPI[生工生物工程( 上海) 股份有限公司ꎬ中                        3:AꎬB)ꎬ实验结果稳定ꎮ

            国]染色 5 minꎬ再用 PBS 清洗掉附着的多余染料ꎬ                      2.3 欧洲云杉胚性细胞系细胞核的完整性观察
            充分稀 释 后 滴 加 到 载 玻 片 上ꎬ 使 用 光 学 显 微 镜                   为进 一 步 验 证 细 胞 核 膜 的 完 整 性ꎬ 以 判 断
            (Olympus BX51ꎬ日本)细胞核经 DAPI 染色显清晰                   LB01 提取液提取欧洲云杉 PEM 细胞核的提取效
            的蓝色荧光ꎬ由此观测细胞核膜完整性ꎮ                                 果ꎬ 本试验对获得的细胞核进行了镜检ꎮ 通过明
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