Page 76 - 《广西植物》2026年第4期
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            1.3 数据处理                                           体的萌发ꎬ是休眠解除的重要标志ꎮ 此外ꎬIAA 含
                 采用 SPSS 26. 0 软 件 ( IBM Corp.ꎬ Armonkꎬ        量在整个休眠过程中保持相对稳定ꎬ但其与 ABA
            NYꎬ USA) 对 生 理 数 据 进 行 单 因 素 方 差 分 析               和 GA 的相互作用可能对激素信号转导网络产生
            (ANOVA)ꎬ以及 LSD 法进行多重比较( P<0.05)ꎮ                   了重要影响ꎮ 例如ꎬIAA 可能通过调节生长素响
            图 表 使 用 Origin 2023 ( OriginLab Corporationꎬ       应因子 ARF 的表达ꎬ间接影响 ABA 和 GA 的信号
            Northamptonꎬ MAꎬ USA) 及 R 语 言 ( v4. 3. 0 ) 的       传递路径ꎬ从而协同调控休眠解除过程ꎮ 这与 Arc

            ggplot2 包(v3.4.2)绘制ꎮ                               等(2013)的研究结果一致ꎬABA 抑制萌发ꎬGA 促
                                                               进萌发ꎬ二者动态平衡决定休眠状态ꎮ
            2  结果与分析                                           2.2.3 抗氧化系统的响应  抗氧化系统在革叶猕
                                                               猴桃应对低温模拟休眠过程中表现出显著的动态
            2.1 革叶猕猴桃需冷特性确定                                    响应ꎮ 本研究测定了 SOD 和 POD 的活性变化ꎬ图
                 由表 1 可知ꎬ室内低温模拟处理后ꎬ革叶猕猴                        4 结果显示ꎬ在休眠起始阶段ꎬSOD 和 POD 的活性
            桃的萌芽率随冷量增加呈快速上升趋势ꎬ50% 萌                            显著升高ꎬ在休眠结束时达到顶峰ꎬ以清除细胞内
            芽率对应的需冷量为 192 ~ 288 h( <7.2 ℃ )ꎬ属于                 过多的活性氧( reactive oxygen speciesꎬROS)ꎬ维持
            低需冷量类型ꎬ而田间自然条件下ꎬ因为暖冬ꎬ有                             氧化还原平衡ꎮ 上述结果表明ꎬ抗氧化酶系统的
            效冷积温不足ꎬ休眠时间延长ꎬ50%萌芽率对应的                            协同作用不仅有助于减轻低温胁迫引起的氧化损
            需冷量为 576 ~ 624 h ( <7.2 ℃ )ꎻ均明显低于主流                伤ꎬ而且还为芽体从休眠状态向萌发状态的过渡
            品种‘海沃德’ (约 1 000 h) (Zhao et al.ꎬ 2017)ꎮ           提供了必要的保护机制ꎮ
            证明该种质具有适应暖冬气候的潜力ꎮ                                  2.3 休眠解除过程中的转录组动态景观
            2.2 休眠过程中生理代谢物质的动态变化规律                             2.3.1 转录组测序及组装  选取室内低温模拟休
            2.2.1 碳水化合物代谢动态  在革叶猕猴桃的休                          眠处理的 4 个不同发育时期的革叶猕猴桃样品开
            眠过程中ꎬ可溶性糖与淀粉含量呈现明显的阶段                              展转录组测序ꎬ共获得 97.30 Gb 的高质量干净数
            性变化规律ꎮ 由图 1 可知ꎬ在休眠起始阶段ꎬ芽体                          据ꎮ 各单一样品的数据量均超过 7.32 Gbꎬ测序准
            内淀粉含量较高ꎬ而随着休眠进程的推进ꎬ淀粉逐                             确度良好ꎬQ20 值范围为 96.79% ~ 98.01%ꎬQ30 值
            渐降解并转化为可溶性糖ꎬ如蔗糖和葡萄糖等ꎬ至                             范围为 91.33% ~ 94.34%ꎬGC 含量稳定在 46.42%
            休眠解除阶段ꎬ可溶性糖含量约为初始阶段的 2                             至 47.33%之间ꎮ 上述质控指标表明ꎬ测序数据质
            倍ꎬ而淀粉含量约下降至最初水平的一半ꎮ 这种                             量可靠ꎬ符合后续生物信息学分析的要求(表 2)ꎮ
            转化模式不仅为芽体提供了必要的能量储备ꎬ还                              2.3.2 差异表达基因( DEGs) 统计分析  如图 5 所
            通过糖信号调控相关基因表达ꎬ从而促进休眠解                              示ꎬ对室内低温模拟处理的革叶猕猴桃样本进行
            除ꎮ 此外ꎬ可溶性糖的积累可能作为一种渗透调                             了主成分分析(principal component analysisꎬPCA)ꎬ
            节物质ꎬ增强细胞对低温胁迫的耐受性ꎬ进一步支                             结果显示生物学重复间聚集紧密ꎬ表明组内样本
            持了芽体在寒冷环境中的生存能力ꎮ                                   一致性较高ꎻ而不同处理组之间分离明显ꎬ反映了
            2.2.2 内源激素平衡的调控作用  内源激素的动                          较为显著的组间差异ꎬ验证了实验设计的合理性
            态平衡在革叶猕猴桃休眠解除过程中发挥了关键                              与可靠性ꎮ 进一步对两两比较组间的 DEGs 进行
            作用ꎮ 由图 2 和图 3 可知ꎬABA、GA、IAA 和细胞                    韦恩图分析ꎬ在 192 h vs 0 h、384 h vs 0 h 和 576 h
            分裂素( cytokininꎬCTK) 4 种 主 要 激 素 的 含 量 变            vs 0 h 3 个比较组中ꎬ分别鉴定出 1 927 个、769 个
            化ꎬ其中 ABA 含量在休眠起始阶段最高ꎬ随后逐渐                          和 1 810 个特异性表达基因( 图 6:A)ꎮ 其中ꎬ192
            下降ꎬ由起始期的 486.75 μgL 降至解除期的                       h vs 0 h 阶段的特异基因最多ꎬ高于其余 2 个时期ꎬ
                                            ̄1
            218.45 μgL ꎻ而 GA 含量则呈现相反的趋势ꎬ由                    揭示在休眠起始阶段ꎬ革叶猕猴桃可能通过激活
                          ̄1
            214.23 pgmL 升至 614.75 pgmL ꎬ在休眠解               或抑制基因表达来响应低温胁迫ꎮ 与此同时ꎬ3 组
                           ̄1
                                                ̄1
            除阶段达到峰值ꎮ 这种 ABA 与 GA 的动态平衡被                        比较发现ꎬ共同拥有的 DEGs 为 8 128 个ꎬ暗示这
            认为是调控休眠解除的核心机制之一ꎬABA / GA                          些基因为低温响应过程中的核心调控因子ꎮ
            比值从 2.27 降至 0.36ꎬ比值的降低直接促进了芽                           通过对各处理组与对照的 DEGs 进行火山图
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