Page 136 - 《广西植物》2023年第2期
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3 3 0                                  广  西  植  物                                         43 卷
            DNA 进行纯度与浓度检测ꎬOD260 / 280 比值应为                     PIC<0.5 时ꎬ该位点为中度多态性位点ꎻ当 PIC≥
            1.7 ~ 1.9ꎮ 随后ꎬ通过 1%琼脂糖电泳检验 DNA 质                   0.5 时ꎬ该位点为高度多态性位点ꎮ 计算 PIC 值所
                                                         ̄1
            量ꎬ将符合要求的模板 DNA 稀释到 50 ngμL ꎬ                     用到的公式(杨国忠等ꎬ2004)如下:
            放置于-20 ℃ 冰箱中备用ꎮ                                                n    n-1
                                                                   PIC = 1-P -2P P  2
                                                                                       2
                                                                              2
            1.5 PCR 扩增                                                    i = 1  i  i = 1  i  j
                                                                   式中:PIC 指多态信息含量ꎻP 和 P 分别表示
                 PCR 扩增反应总体积 为 10 μLꎬ其 中 包 含 2                                                i    j
                                                               第 i 个和第 j 个等位基因频率ꎻn 表示等位基因数ꎮ
                                ̄1
            μL DNA(50 ngμL )ꎬ1 μL PCR Buffer( 10 ×)ꎬ
                                                                   引物的有效扩增率指能够有效扩增的引物数
            0.2 μL dNTPsꎬ上下游引物各 0. 25、0. 07 μL Taq
                                                               量与引物总数量的比值ꎮ 引物的多态性比率指具
                                       ̄1
            DNA Polymerase ( 5 U  μL )ꎬ 以 及 6. 23 μL 的
                                                               有能够有效扩增且多态性的引物数量与引物总数
            ddH Oꎬ该扩增反应在 PCR 仪上完成ꎮ SSR ̄PCR
                2
                                                               量的比值ꎮ
            扩增的程序:94 ℃ 预变 4 minꎬ94 ℃ 变性 15 sꎬ55
            ℃ 复变性 15 sꎬ72 ℃ 延伸 30 sꎬ30 个循环ꎬ72 ℃ 延
                                                               2  结果与分析
            伸 20 minꎬ12 ℃ 保存ꎮ
            1.6 引物有效性及多态性检测
                                                               2.1 枫香转录组中 SSR 位点的分布特点
                 将 PCR 扩增后的产物通过 8%聚丙烯酰胺凝
                                                                   通过枫香转录组测序共挖掘到 23 777 个枫香
            胶电泳进行分离ꎮ 实验步骤:使用移液枪吸取 1.2
                                                               SSR 位点ꎬ平均每 3.13 kb 存在 1 个 SSR 位点ꎮ 通
            μL 的滴加了溴酚蓝指示剂的扩增引物点在聚丙
                                                               过统计发现ꎬ枫香转录组中 SSR 主要有单核苷酸
            烯酰 胺 胶 板 上ꎬ 凝 胶 首 尾 点 1 μL 50 ~ 500 bp
                                                               及二到六个核苷酸等 6 个简单重复单元类型ꎮ 此
            Markerꎬ在 240 V 恒压下电泳ꎬ通过溴酚蓝指示剂
                                                               外ꎬ还有少量复杂重复类型( 表 2)ꎬ其中单核苷酸
            调整电泳时间ꎻ电泳结束后ꎬ将凝胶使用 ddH O 清
                                                     2
            洗 2 次ꎬ放入固定液中震荡 10 minꎬ随后取出凝胶                       类型占 SSR 位点总数的 46.54%ꎬ二核苷酸重复类
            放入超纯水中震荡清洗 2 ~ 3 次ꎬ每次 2 minꎻ清洗                     型占 SSR 位点总数的 33.10%ꎬ三、四、五、六核苷
            后ꎬ将胶板放入银染液中进行银染ꎬ震荡 7 minꎬ银                         酸类型分别占 SSR 位点总数的 17.80%、1.17%、
                                                               0.49%、0.88%ꎮ 单核苷酸类型中ꎬ出现频率最高
            染后再次放入蒸馏水中震荡清洗 2 ~ 3 次ꎬ每次 2
            minꎻ将清洗后的凝胶放入显影液中震荡ꎬ直至胶                            的是 T / A(66.81%)ꎬ其次是 A / T(24.99%)ꎻ二核
            板上出现清晰条带为止ꎻ用 ddH O 清洗凝胶 2 次                        苷酸类型中ꎬ出现频率最高的是 CT / AG(24.7%)ꎬ
                                          2
                                                               较之稍少的是 TC / GA( 23. 72%)ꎻ三核苷酸 类 型
            后读条带ꎬ并拍照保存ꎮ
            1.7 数据统计分析                                         中ꎬ出现最多的是 CAG / CTG( 6. 17%)ꎬ次之的是
                 人工进行条带判读ꎬ通过是否扩增出有效条                           GAA / TTC (5.08%)ꎻ四核苷酸类型中ꎬ出现最多的
            带判断引物有效性ꎮ 对具有有效性的引物ꎬ其不                             是 TTTA / TAAA ( 17. 2%)ꎻ 五 核 苷 酸 类 型 中ꎬ
            同扩增产物按条带长度从大到小用 A、B、C进                         CTTTT/ AAAAG(8.62%) 出现频率最高ꎻ六核苷酸
            行编号ꎬ汇总后通过 Popgene 32 软件计算以下参                       类 型 中ꎬ 出 现 最 多 的 是 ACCAGC / GCTGGT
                                                               (4.72%)ꎮ可见ꎬ枫香 SSR 位点以单核苷酸、二核
            数:( 1) 观 测 等 位 基 因 数 目 ( observed number of
                                                               苷酸为主ꎬ共占 SSR 位点总数的 79.64%ꎬ适用于
            allelesꎬNa)ꎻ ( 2) 有 效 等 位 基 因 数 目 ( effective
                                                               设计引物的三到六核苷酸重复类型位点总数仅占
            number of allelesꎬ Ne) ( Hartl et al.ꎬ 1989 )ꎻ ( 3 )
                                                               位点总数的 19.46%ꎬ限制了在此基础上开发枫香
            Shannon 多样性指数( Shannon’ s diversity indexꎬI)
            (Shannon et al.ꎬ 1949)ꎻ(4) 观测杂合度( observed         SSR 引物的数量ꎮ
            heterozygosityꎬ Ho )ꎻ ( 5 ) 期 望 杂 合 度 ( expected       由表 3 可知ꎬSSR 重复次数在 5 ~ 78 次之间ꎬ
            heterozygosityꎬHe) ( Nei et al.ꎬ 1973)ꎮ 通 过 PIC ̄   主要集中在 5 ~ 24 次之间ꎮ 其中ꎬ重复次数数量在
            CALC 软 件 计 算 PIC ( polymorphism information        SSR 总位 点 数 量 中 占 比 最 多 的 是 5 ~ 8 次ꎬ 共 有
            content)值( Botstein et al.ꎬ 1980)ꎮ PIC 值指多态        8 787个ꎬ占 SSR 位点总数的 36.96%ꎻ排在第二位
            信息含量ꎬ是判断 SSR 引物多态性的重要指标ꎬ当                          的是 9 ~ 12 次重复ꎬ共有 8 417 个ꎬ占 SSR 位点总
            PIC≤0.25 时ꎬ该位点为低度多态性位点ꎻ当 0.25<                     数的 35.40%ꎻ 重复次数在 13 ~ 16 次、 17 ~ 20 次和
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