Page 112 - 《广西植物》2020年第5期
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7 0 8                                 广  西  植  物                                         40 卷
   展中心产品ꎻ以上试剂均为分析纯试剂ꎮ                                梯度ꎻ进样量:10 μLꎻ柱温:35 ℃ ꎻ体积流速:0.6
       薄层层析板 Silica gel 60 ̄F254ꎬ德国 Merck 公           mLmin ꎻ检测波长:203 nmꎮ
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   司产 品ꎻ DEAE ̄Cellulose DE ̄52ꎬ 英 国 Whatman 公         1.2.5 酶的分离纯化  先向 DEAE ̄cellulose DE52
   司产品ꎻCS930 双波长薄层扫描仪购置于日本津岛                         阴离子交换柱中缓慢上样 6 mL 粗酶液ꎬ进行分离
   公司ꎻBSZ ̄160 自动部分收集器由上海金生达生化                        提纯ꎮ 再配制由 20 mmolL pH3.0 的磷酸氢二
                                                                                 ̄1
   仪器有限公司提供ꎻ蛋白质电泳仪购置于 Bio ̄Rad                        钠-柠檬酸缓冲体系溶液溶解的浓度为 40、50、60、
                                                                            ̄1
   公司ꎻWaters 2695 高效 液 相 色 谱 仪ꎻWaters 2996           70、80、90、100 mmolL 的 KCl 溶液ꎬ对上样后的
   PDA 光电二极管阵列检测器ꎻKnauer C18 色谱柱                     粗酶液进行梯度洗脱ꎬ每一梯度洗 100 mLꎬ控制流
                                                                      ̄1
   (5 μmꎬ3 mm × 250 mm)ꎮ                             速为 1 mLmin ꎬ用自动部分收集器ꎬ大约每 3
   1.2 方法                                            mL 收集 1 试管洗脱液ꎻ收集酶液与 0.1% Rb3 反
   1.2.1 粗酶液的制备  Aspergillus sp. P90r 菌接种            应ꎬTLC 检测ꎬ筛选出含有 Rb3 糖基水解酶活力的
   于含 5%的麦汁、1% 的三七茎叶浸出液ꎬpH = 6.6                     洗脱液ꎮ
   的察氏培养基中ꎬ在 30 ℃ 摇床培养 5 ~ 6 dꎻ离心除                   1.2.6 蛋白质分子量的测定  将含有酶活力的洗
   菌体ꎬ上清液中缓慢加入已研磨好的硫酸铵粉末                             脱液ꎬ做 SDS ̄PAGE 电泳ꎬ确定产生单一条带的试
   至 80 %饱和度ꎬ摇匀ꎬ于 4 ℃ 下静置 6 hꎻ离心收集                   管ꎬ同时计算人参皂苷 Rb3 糖基水解酶的分子量

                                                 ̄1   (李建武ꎬ1997)ꎮ SDS 聚丙烯酰胺凝胶的浓缩胶
   蛋白质沉淀ꎮ 将沉淀溶于 少 量 的 0. 01 mol L
   pH = 3.0 磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液ꎬ透析ꎬ每 2 h                    和分离胶分别为 5%和 12%ꎬ电压分别为 60 V 和
   更换一次缓冲液ꎬ透析 20 hꎻ离心除杂ꎬ沉淀溶于                         120 Vꎮ
   0.02 molL pH3.0 磷酸氢二钠 -柠檬酸缓冲液                   1.2.7 人参皂苷 Rb3 糖基水解酶最佳反应条件
               ̄1
   中ꎬ即为粗酶液ꎮ                                          测定最佳 pH:分别配制 pH 值为 1.3、2.2、3、4、5、
   1.2.2 酶活力的测定  取 0.1 mL 的 0.2%的人参皂                 6、7、8、9、10 的缓冲溶液ꎬ将 0.1%的人参皂苷 Rb3
   苷 Rb3(0.02 molL ꎬpH3.0 磷酸氢二钠-柠檬酸                溶于不同 pH 值的缓冲溶液中ꎬ每个 pH 值底物溶
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   缓冲液)与 0.1 mL 粗酶液混合ꎬ在 45 ℃ 条件下反                    液与同 pH 值的酶液等体积均匀混合ꎬ在适宜的条
   应 24 hꎬ加入 0.2 mL 水饱和正丁醇终止酶反应ꎬ取                    件下做酶促反应ꎬ用 TLC 法检测人参皂苷 Rb3 的
   上层有机相作 TLC 薄层层析或 HPLC 检测ꎮ 酶活                      水解情况ꎮ 确定 pH 稳定性:取纯化酶液与不同
   力单位ꎬ定义为每小时降解 1 mmol Rb3 酶量为一                      pH 值的缓冲液等量混合ꎬ室温下放置 30 minꎬ加

   个酶活力单位ꎮ                                           入人参皂苷 Rb3 底物溶液ꎬ于酶的最适 pH 值反应
   1.2.3 薄层层析( TLC)   酶水解人参皂苷 Rb3 生                  体系中检测酶活力ꎬ以未经处理过的酶活力作为
   成产物用 TLC 方法测定ꎮ 展开剂为 V( 氯仿) ∶                      100%计算相对酶活力ꎮ 确定最佳反应温度:在上
   V(甲醇) ∶ V(水)的比例为 7 ∶ 3 ∶ 0.5ꎬ展开后用                 述反应条件下ꎬ采用 35、40、45、50、55℃ 条件下进
   10% H SO 水溶液ꎬ于 105 ℃ 加热显色ꎮ TLC 检测                 行酶催化反应ꎮ 确定最佳反应时间:在最佳反应
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   图中的各组分的百分含量ꎬ利用 Bandscan 分析软                       温度下ꎬ 将 酶 液 与 底 物 溶 液 分 别 反 应 1 / 6、1 / 3、

   件分析(Liu et al.ꎬ 2015)ꎮ                            1 / 2、1、2、4、8、12、24 hꎬ用 TLC 法检测人参皂苷
   1.2.4 高效液相色谱(HPLC)   色谱条件:色谱仪ꎬ                    Rb3 的水解情况ꎮ
   Waters 2695 高 效 液 相 色 谱 分 析 仪ꎬ Waters 2996        1.2.8 酶反应动力学  配制浓度分别为 14.3、16.7、
   PDA 光电二极管阵列检测器及 Empower 色谱工作                      20.0、25.0、33.0、50.0 mmolL 的 Rb3 底物溶液
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   站进行检测ꎮ 色谱柱:Knauer C18 柱ꎻ流动相:乙                     与等 体 积 纯 酶 液 混 合ꎬ 最 终 浓 度 分 别 为 7. 15、
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   腈( A) - 水 ( B)ꎻ0 ~ 20 minꎬ20% A 等 度ꎻ20 ~ 31       8.35、10.0、12.5、16.5、25.0 mmolL 的 Rb3 底物
   minꎬ20%A~ 32%A 线性梯度ꎻ31 ~ 40 minꎬ32%A ~            溶液ꎻ于 45 ℃ 反应 5、10、20、40、60、90、120、180
   43%A 线性梯度ꎻ40 ~ 70 minꎬ43%A ~ 100%A 线性             min 后ꎬ对 Rb3 反 应 产 物 做 TLC 检 测ꎬ利 用 分 析
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