Page 127 - 《广西植物》2026年第4期
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4 期           黄文俊等: 不同采收期对‘东红’猕猴桃果实贮藏性、品质和响应低温的影响                                           6 8 5

            另外 3 框用于不同贮藏期结束时及转移至 20 ℃                          的测定ꎬ测定方法同 1.3ꎮ 检测后ꎬ取每 10 个果实
            货架 7 d 结束时果实腐烂率检测ꎬ最后 1 框用于低                        的果肉大致等量混合ꎬ匀浆后作为 1 个生物样本
            温贮藏结束时软熟后内在品质检测ꎮ 果框直接置                             用于总糖、总酸和 Vc 含量检测ꎬ每个采收期 3 个
            于 1 ℃ 冷库内预冷并低温贮藏 16 周ꎬ之后转移到                        生物学样本ꎮ 可溶性总糖含量按照« 水果及制品
            20 ℃ 下贮藏 7 d 以模拟货架期ꎮ 在低温贮藏过程                       可溶性糖的测定 3ꎬ5 ̄二硝基水杨酸比色法» ( NY /
            中ꎬ从 3 框果实中每次取 20 个果实用于硬度和可                         T 2742—2015) 测定ꎬ结果以葡萄糖含量折算ꎬ单
            溶性固形物含量检测ꎬ每 2 周检测 1 次ꎮ 于低温贮                        位为%ꎮ 总 酸 含 量 按 照 « 食 品 中 总 酸 的 测 定»
            藏 10 周、12 周和 16 周时分别取 1 框果实统计腐                     (GB / T 12456—2021) 测定并略作修改ꎬ采用自动
            烂率ꎬ统计完成后转移到 20 ℃ 下贮藏 7 dꎬ再次统                       滴定仪(HI931ꎬ Hanna Instrument) 和 0.1 molL     ̄1

            计腐烂率ꎮ 另外ꎬ参考 Burdon 等(2017) 的方法ꎬ                    氢氧化钠(NaOH)滴定液将样本溶液 pH 值滴定至
            选择早(H1-H2)、中( H5-H6)、晚( H7-H9) 期采                  8.2ꎬ以柠檬酸折算总酸含量ꎬ单位为%ꎮ Vc 含量

            收的果实ꎬ将装有果实的单层托盘盒分别置于 1、                            按照«食品安全国家标准 食品中抗坏血酸的测定»
            5、10、20 ℃ 下贮藏 7 dꎬ之后检测果实硬度及可溶                      (GB 5009.86—2016)中的 2ꎬ6 ̄二氯靛酚滴定法测定
            性固形物含量ꎬ每个采收期检测 20 个果实ꎬ以分                           并略作修改ꎬ使用自动滴定仪( HI931ꎬ Hanna) 滴
                                                                                      ̄1
            析不同采收期对低温响应的影响ꎮ                                    定ꎬ其单位为 mg100 g 鲜重(FW)ꎮ 固酸比和糖
            1.3 果实成熟度指标及测定方法                                   酸比则分别为可溶性固形物含量与总酸之比ꎬ可溶
                 果实采收时成熟度指标包括果重、果实硬度、                          性总糖和总酸之比ꎮ 果实腐烂率为腐烂果实数量
            果心硬度、果肉颜色、可溶性固形物含量和干物质                             与检测果实总数的百分比ꎮ
            含 量 等ꎮ 果 重 使 用 分 析 天 平 ( Mettler Toledoꎬ           1.5 数据分析
            Switzerland)测定ꎮ 果实硬度和果心硬度的测定参                          结果以平均值±标准误表示ꎮ 不同采收期之间
            考 Li 等 ( 2016) 的 方 法ꎬ 采 用 GS ̄15 质 地 分 析 仪          的显著性差异分析采用 Tukey 多重检验ꎬ显著水平
            (GUSS ManufacturingꎬSouth Africa)测量ꎬ在果实赤           为 P<0.05ꎮ 贮藏过程中果实硬度与可溶性固形物
            道处削掉约 1 mm 厚果皮ꎬ使用直径 7.9 mm 探头                      含量的相关性分析采用分段线性拟合分析ꎮ 所有
            测定果实硬度ꎬ每个果实测量 2 次ꎬ测定部位互为                           数据分析和绘图均由 Origin 2024b 软件完成ꎮ
            90 度ꎬ取平均值作为硬度值ꎬ单位为 Nꎮ 在果实果
            梗端离果梗 15 mm 横切ꎬ采用直径 3 mm 探头插入                      2  结果与分析
            果心组织中测量果心硬度ꎬ仅测 1 次ꎬ单位为 Nꎮ
            果肉颜色采用 CR400(Konica Minoltaꎬ Japan) 色差             2.1 不同采收期对果实成熟度的影响
            计测定ꎬ每个果实测量 2 次ꎬ测定部位互为 90 度ꎬ                            9 个不同时期采收的果实成熟度结果如表 1
            取平均值作为果肉颜色值ꎬ单位为(°)ꎮ 可溶性固                           所示ꎮ 果重仅 H3 与 H8 之间呈显著性差异ꎬ其他
            形物含量使用 PAL ̄1( Atagoꎬ Japan) 折射仪测定ꎮ                 不同采收期之间无显著性差异ꎬ可能与 H3 果重最
            干物质含量采用称重法测定ꎬ取果实赤道部位厚                              低、H8 果重最高有关ꎮ 果实硬度在前 6 个 时 期
            2 ~ 3 mm 的 横 切 片ꎬ 置 于 FD ̄60 型 食 品 脱 水 机            (H1-H6)较高ꎬ维持在 60 N 左右ꎻ从 H7 开始逐渐
            (NESCOꎬ USA)上 65 ℃ 加热 24 h 至恒重ꎬ分别称                 下降ꎬ至 H9 时期降至 13.32 Nꎬ接近可食用硬度水
            量烘干前后切片的质量ꎬ两者比值的百分比即为                              平ꎮ 果心硬度在 H1-H9 时期内变化幅度较小ꎬ即

            干物质含量ꎮ                                             使在采 收 晚 期 ( H7 - H9) 仍 偏 高ꎬ 处 于 36. 46 ~
            1.4 内在品质指标及测定方法                                    46.40 N 之间ꎮ 果肉颜色在 H1 时已降至 103.51°ꎬ
                 低温贮藏 16 周后ꎬ将果实转移到 20 ℃ 货架中                    达到黄肉品种商业采收要求ꎬ之后随采收推迟逐
            贮藏 7 dꎬ每个采收期随机挑选 30 个软熟果实( 硬                       渐下降至 H9 时期的 96.82°ꎻ其中ꎬ早( H1 -H2)、
            度介于 3 ~ 8 N 之间)用于内在品质检测ꎬ包括果实                       中(H4-H5)、晚(H8-H9) 期采收果实之间存在显
            硬度、可溶性固形物含量、可溶性总糖、总酸、固酸                            著性差异ꎮ 可溶性固形物含量在 H1 -H5 时期维
            比、糖酸比和维生素 C( vitamin CꎬVc) 等指标ꎮ 均                  持在 8.66% ~ 9.52%之间ꎬ无显著性差异ꎻ从 H7 开
            以单果为单位进行果实硬度和可溶性固形物含量                              始快速上升到 10.81%ꎬ随后逐渐上升至 H9 时期
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